Ⅰ 影響微生物低溫致死的因素有哪些
影響微生物低溫致死的因素有以下幾點。
(l)溫度。儲藏溫度在冰點成冰點以上時，部分能適應低溫的微生物會逐漸生長繁殖。由於各種微生物生物學特性的差異，溫度對於各種微生物生長的影響程度是不同的。凍結溫度對微生物的殺傷性很大，尤其是-5~-2℃的溫度范圍對微生物的殺傷
性最大。但是當溫度下降到-25~20℃時，微生物的死亡速率反而緩慢得多，因為在此溫度范圍，微生物細胞內的生化反應幾乎完全停止。
(2)冷卻速度。在凍結溫度以上時，冷卻速度越快，微生物的死亡速率也越大。這是因為在冷卻過程中，微生物細胞內新陳代謝所需要的各種生化反應的協調一致性被迅速破壞。食品凍結以後的情況恰恰相反，緩凍會導致大量的微生物死亡，而速凍則相反。因為緩凍時形成了量少粒大的冰晶體，不僅對微生物細胞產生機械破壞作用，還能促進蛋白質變性。
(3)結合水分和過冷狀態。細菌和黴菌的芽抱中的水分含量較低，其中結合水分的含量較高，在冷卻時較易進入過冷狀態，而不形成冰晶體，這就有利於保持細胞內膠質體的穩定性，菌體不易死亡。
(4)介質。高水分和低pH值的介質會加速微生物的死亡，而食品中所含的糖、鹽、蛋白質、脂肪等物質對微生物有一定的保護作用。
Ⅱ 接種環(針)接種前後灼燒的目的是什麼為什麼在接種前一定要將其冷卻如何判斷
接種前灼燒的目的是為了徹底的殺滅環上得細菌、芽孢等,可能引起污染的一切生物體.
接種的時候一定要冷卻,因為不冷卻的話,你接的目標菌可能就直接殺死了（被熱的環燙死）,如何判斷已經冷卻了：一般是用接種環在玻璃平皿的上蓋內側接觸一會(大約5s好了),然後用接種環接觸培養基,培養基沒有被燙壞、沒有冷熱物接觸是發出的糍糍聲,就ok了,可以接菌了.
Ⅲ 低溫抑制微生物生長繁殖的主要原因
低溫可以降低生物體內各種化學反應的活性,還有各種酶的活性,然後體內的生化反應不能按照正常規律進行,所以它們不能進行很多生命活動,包括繁殖。
Ⅳ 平板菌落計數法中,為什麼熔化後的培養基再冷卻至45攝氏度左右才能倒平板
可能原因有三點：1、融化後的培養基溫度較高，不經冷卻就倒入冷的平板中，則會產生水汽和水滴附著表面壁上，甚至融液的濺出，影響塗布效果。2、培養基溫度過高，在傾倒培養液時燙手，同樣影響實驗的順利操作。3、培養基的各種成分需要降低溫度來穩定，避免導入平板的培養基成分分布不均勻。
Ⅳ 為什麼48度到50度的融化瓊脂培養基傾倒至培養皿中不會殺死菌液中的大多數的微生物
微生物生長溫度有三個區段，最低生長溫度、最高生長溫度和最適生長溫度。在最低生長溫度時微生物的代謝非常緩慢，生長受抑制，因而常用低溫來保藏菌種；在最適溫度下微生物代謝活躍，適宜微生物生長；在最高生長溫度下微生物易衰老，當溫度超過一定界限時，就會對微生物起到殺滅作用。也就是我們所知道的高溫殺菌的作用。
Ⅵ 微生物對溫度的要求不同的原理是什麼
不同微生物的酶活性、物質運輸、物質溶解對溫度的需求不同。
Ⅶ 為什麼營養瓊脂在使用時要保持在46度
瓊脂一般到40度左右開始凝固，但是溫度太高的話，又容易將微生物燙死，所以使用溫度保持在46度左右比較好。
Ⅷ 微生物的培養方法
1．平板劃線分離培養法
對混有多種細菌，採用劃線分離和培養，使原來混雜在一起的細菌沿劃線在瓊脂平板表面分離，得到分散的單個菌落，以獲得純種。平板劃線分離法通常有兩種方法：
①分區劃線分離法：此法常用於含菌量較多的細菌的分離。先用接種環挑取標本塗布於瓊脂平板1區（占培養基總面積的¼）並作數條劃線，再於2、3、4區依次劃線。每劃完一個區域，均將接種環燒灼滅菌1次，冷後再劃下一區域，每一區域的劃線均與上一區域的劃線交接1~3次。一個成功分區劃線的平板，培養後分別觀察1區形成菌苔，2區菌落連成線，3區和4區可分離到單個菌落。
②連續劃線分離法：此法常用於含菌量不多的標本或培養物中的細菌分離培養。方法是先將接種物在瓊脂平板上1/5處輕輕塗抹，然後再用接種環或拭子在平板表面曲線連續劃線接種，直至劃滿瓊脂平板表面。
2.瓊脂斜面接種法
主要用於菌落的移種，以獲得純種進行鑒定和保存菌種等。用接種環（針）挑取單個菌落或培養物，從培養基斜面底部向上劃一條直線，然後再從底部沿直線向上曲折連續劃線，直至斜面近頂端處止。生化鑒定培養基斜面接種，用接種針挑取待鑒定細菌的菌落，從斜面中央垂直刺入底部，抽出後在斜面上由下至上曲折劃線接種。
3．穿刺接種法
此法多用於半固體培養基或雙糖鐵、明膠等具有高層的培養基接種，半固體培養基的穿刺接種可用於觀察細菌的動力。接種時用接種針挑取菌落，由培養基中央垂直刺入至距管底0.4cm處，再沿穿刺線退出接種針。雙糖鐵等有高層及斜面之分的培養基，穿刺高層部分，退出接種針後直接劃線接種斜面部分。
4．液體培養基接種法
用於各種液體培養基如肉湯、蛋白腖水、糖發酵管等的接種。用接種環挑取單個菌落，傾斜液體培養管，在液面與管壁交界處研磨接種物（以試管直立後液體淹沒接種物為准）。此接種法應避免接種環與液體過多接觸，更不應在液體中混勻、攪拌，以免形成氣溶膠，造成實驗室污染。
5．傾注平板法
本法主要用於飲水、飲料、牛乳等標本中的細菌計數。取純培養物的稀釋或原標本1ml至無菌培養皿內，再將已融化並冷卻至45~50℃左右的瓊脂培養基15~20ml傾注入該無菌培養皿內，混勻，待凝固後置37℃培養，長出菌落後進行菌落計數，以求出每毫升標本中所含菌數。先數6個方格（每格為1cm2）中菌落數，求出每格的平均菌落數，並算出平皿直徑，然後按下列公式計數，求出每毫升標本中的細菌數。
全平板菌落數=每方格的平均菌落數×лr2
每ml標本中的細菌數=全平板菌落數×稀釋倍數
6．塗布接種法
本法多用於紙片擴散法葯敏試驗的細菌接種。將一定量或適量的菌液加到瓊脂培養基表面，然後用滅菌的L型玻璃棒或棉拭子於不同的角度反復塗布，使被接種液均勻分布於瓊脂表面，然後貼上葯敏紙片，或直接培養，本法經培養後細菌形成菌苔。