㈠ 純化水微生物限度檢查操作
純化水微生物限度操作規程
文件編號
總
頁
數
共
3
頁
制訂部門
實施日期
起
草
人
審
核
人
批
准
人
起草日期
審核日期
批准日期
1.
目的
本規程旨在為微生物限度檢查提供一個標准化方法。
2.
適用范圍
微生物限度實驗室
3.
責任者
QC
主管生測員
4.
安全注意事項
嚴格無菌操作，防止微生物污染。
5.
規程
5.1
取樣
a
．在車間、實驗室所有用水點按序取樣，標明日期和取樣點位置，一個監測
點取水
3
次，一次
250mL
，送檢驗室按中國葯典
2010
年版二部標准進行全檢。
b
．
取樣前將直接接觸樣品的容器用
75%
酒精棉球進行擦拭，
採用滅菌後瓶收
集樣品。
c
．取樣時，取樣人洗手並消毒，取樣前用純化水淋洗檢驗用取樣瓶和瓶塞
3
次。滅菌瓶至少取
200mL
用於微生物檢驗用水，微生物檢驗應在取樣後的
1
小
時內進行，或將樣品冷藏並在
4
小時內進行檢驗。
5.2
微生物限度檢查
純化水檢驗標准微生物限度檢查採用平皿法和薄膜過濾法。
5.3
微生物培養
（
1
）
除另有規定，
本檢查法中細菌培養溫度為
30-35
℃，黴菌、酵母菌培養溫
度為
㈡ 用顯微鏡觀察該河流中的微生物前需要用什麼吸取水樣
用滴管吸取河水上表層的水樣，因為上表層氧氣充足，微生物多，然後滴在載玻片上，蓋上蓋玻片，放在顯微鏡下觀察。
㈢ 純化水中的微生物檢測怎麼做 要詳細
1檢測前的准備
1.1儀器：微生物限度檢驗儀
微生物限度培養器
1.2培養基：TGYA瓊脂培養基、R2A瓊脂培養基
上述培養基均須做培養基的促生長試驗，TGYA瓊脂培養基的促生長試驗參見微生物計數操作檢查法SOP07-QC-3-017，R2A瓊脂培養基促生長試驗中選擇的菌種是銅綠假單胞菌、大腸埃希菌、金黃色葡萄糖球菌，操作方法同微生物計數操作檢查法SOP07-QC-3-017中培養基的促生長試驗。
75%的酒精
1.3開啟凈化工作台，把微生物限度檢驗儀連接電源。
2檢測
2.1薄膜過濾法
使用孔徑大小不超過0.45μm的薄膜過濾器。
2.2在凈化工作台下，用火焰噴槍對泵頭端面和過濾片進行消毒。把微生物限度培養器固定在微生物限度檢驗儀上，打開微生物限度培養器蓋子。
2.3取50ml的純化水，倒入微生物限度培養器中，打開微生物限度檢驗儀開關，立即過濾。過濾完成後，取下過濾器，在過濾器膜的另一面中，傾注TGYA瓊脂培養基，蓋上蓋子。
2.4取50ml的純化水，倒入微生物限度培養器中，打開微生物限度檢驗儀開關，立即過濾。過濾完成後，取下過濾器，在過濾器膜的另一面中，傾注R2A瓊脂培養基，蓋上蓋子。
2.5每個樣品過濾後均做2單個培養，檢測完畢，取一微生物限度培養器固定在微生物限度檢驗儀上，注入100ml的75%酒精過濾，關閉儀器、電源。
3培養
傾注TGYA瓊脂培養基的，在30℃-35℃培養48h-72h，並計數。傾注R2A瓊脂培養基的，在20℃-25℃培養5d-7d，並計數。
分別計算和報告兩種培養基每1ml純化水中的cfu值。
㈣ 水樣中純種微生物的分離過程以及試驗所用培養基，營養液等
你這個問題太籠統了。
水樣中的微生物包括真菌，細菌。不同的目標微生物有不同的培養方法，培養基和培養液也是要根據你目標微生物的不同進行選擇。
下面列出純種細菌篩選的一般步驟。
1.首先確定所要培養的目標微生物。
2.根據目標微生物，確定培養基。你可以參考相關文獻。
3.接種，富集。將水樣接種到相應的培養基中進行富集培養，富集培養需要的次數據富集所得菌而定。一般需富集至10的8次方個每毫升。
4.劃平板。
5.挑取單菌落，進行純培養。
重復4.5部即可。
㈤ 微生物 水 采樣
可以用深水采樣器http://www.patent-cn.com/G01N/CN2410633.shtml
還有一種是帶泵的野外專用取樣器http://www.goepe.com/apollo/prodetail-jessecheung-498467.html
至於保存可以用水樣檢測拭子，冷藏可保存12個月，室溫可保存4周http://www.szfitly.com/shopdetail/proct/20100621-9131995.html
㈥ 如何檢測自來水中的微生物
(1)采水樣 先將自來水籠頭用火焰燒3分鍾滅菌,再擰開水
籠頭使水流5分鍾後,以無菌容器接取水樣.
(2)用無菌吸管取水樣1ml,注入兩個無菌培養皿中,
並分別傾料15ml已溶化並冷卻到45℃左右的普通瓊脂培養基,
並通過平面旋搖使水樣與培養基充分混勻,蓋上皿蓋.另取一空
的無菌培養皿,傾注入15ml普通瓊脂培養基,做空白對照.分別
做好標記,置37℃培養箱中培養24h,觀察是否有微生物生長.
計算菌落數,並觀察菌落特徵.
㈦ 自來水的微生物檢測方法是什麼樣的
自來水的微生物檢測方法是：
每周進行水樣微生物檢測時，先打開水龍頭放水2~3分鍾——出水口用75%酒精噴灑——防水5分鍾以上——用滅菌容器取樣（滅菌前加入0.1ml的2%的硫代硫酸鈉）。
加入硫酸鈉的目的是：中和水中的余氯，中和後利於細菌的生長繁殖，以便觀察．
㈧ 生產用水的微生物檢測標准與采水樣的方法是什麼
我做過用固體培養基測水樣中微生物含量，菌落數要求在30～300個才可以計數。你的培養基中菌落數太少，你檢查一下你的取樣方法和操作步驟有沒有規范，不行就減小稀釋倍數試試。而且一般每一個稀釋濃度下要做三組平行試驗。
計算時，先計算每一稀釋濃度下三組平行試驗的平均數，把不同濃度下的平均數進行比較，首先選擇平均菌落數在30—300之間的，當只有一個稀釋度的平均菌落數符合此范圍時，則以該平均菌落數乘其稀釋倍數即為該水樣的細菌總數。
㈨ 水樣採集時的注意事項
地表水采樣
01采樣斷面應有明顯的標志物，采樣人員不得擅自改動采樣位置。采樣時應使用GPS定位或固定標志物確定采樣位置，以保證采樣點位置的准確。
02水溫、pH值、溶解氧、電導率、透明度、鹽度等項目建議現場監測。
03對於河流斷面，可以使用測距儀和測深計，測量河流的寬度和深度；對於湖庫點位，可以使用測深計，測量湖庫深度。然後，按照HJ/T91的要求，判斷需要採集垂線數和垂線上的采樣點數，分別採集水樣。
04采樣時，不可攪動水底的沉積物。
05如果水樣中含沉降性固體(如泥沙等) ，則應分離除去。分離方法為：將所采水樣搖勻後倒入筒形玻璃容器(如1~2L量筒) ，靜置30分鍾，將不含沉降性固體但含有懸浮性固體的水樣移入盛樣容器並加入保存劑。測定水溫、pH值、溶解氧、電導率、總懸浮物和油類的水樣除外。
06測定湖庫水的化學需氧量、高錳酸鹽指數、葉綠素a、總氮、總磷時，水樣靜置30分鍾後，用吸管或虹吸方式移取水樣，吸管進水尖嘴應插至水樣表層50mm以下位置，再加保存劑保存。
07測定五日生化需氧量的水樣，應單獨采樣，且使用乾燥的樣品瓶。采樣前，不用水樣對樣品瓶進行沖洗。將水樣採集於棕色玻璃瓶中，水樣必須注滿，上部不留空間。
08測定硫化物的水樣，應單獨采樣，先加入適量乙酸鋅-乙酸鈉溶液，再採集水釋至瓶頸時加入氫氧化鈉溶液至剛有白色沉澱產生，加水樣充滿容器，瓶塞下不留空氣。
09測定石油類的水樣，應單獨采樣，且使用乾燥的樣品瓶。采樣前，不用水樣對樣品瓶進行沖洗。采樣前先破壞可能存在的油膜，在水面至300mm採集柱狀水樣，採集的水樣全部用於測定。
10測定葉綠素a的水樣，應單獨采樣，且使用乾燥的樣品瓶。采樣前，不用水樣對樣品瓶進行沖洗。如果水樣中含沉降性固體(如泥沙等) ，用鋁箔避光沉降30分鍾，取上層水樣轉移至棕色硬質玻璃瓶。
11測定重金屬銅、鉛、鋅、鎘、入海控制斷面監測項目鐵和錳的水樣，採集的水樣不進行自然沉降，在現場立即(船隻採樣不具備過濾條件除外) 用0.45μm的微孔濾膜過濾處理後採集。
12細菌學樣品的採集要求：採集樣品時，采樣瓶不得用樣品洗滌，採集樣品於滅菌的采樣瓶中。清潔水體的采樣量不低於400mL，其餘水體采樣量不低於100mL。採集河流、湖庫等地表水樣品時，可握住瓶子下部直接將帶塞采樣瓶插入水中，約距水面l0~ 15cm處，瓶口朝水流方向，拔瓶塞，使樣品灌入瓶內然後蓋上瓶塞，將采樣瓶從水中取出。如果沒有水流，可握住瓶子水平往前推。采樣量一般為采樣瓶容量的80%左右。樣品採集完畢後，迅速紮上無菌包裝紙。採集地表水、廢水樣品及一定深度的樣品時，也可使用滅菌過的專用采樣裝置采樣。
13採集揮發性有機物樣品時，不宜用水樣進行盪洗，應使水樣在樣品瓶中溢流不留空間，取樣時應盡量避免或減少樣品在空氣中暴露。所有樣品均採集平行雙樣。
14用船隻採樣時，采樣船應位於下遊方向，逆流采樣，避免攪動底部沉積物造成水樣污染。采樣人員應在船前部采樣，盡量使采樣器遠離船體。
15在同一采樣點上分層采樣時，應自上而下進行，避免不同層次水體混擾。
16測溶解氧、五日生化需氧量和有機污染物等項目時，水樣必須注滿容器，避免水樣曝氣或有氣泡存在於瓶中。
17測定油類、五日生化需氧量、溶解氧、硫化物、余氯、糞大腸菌群、懸浮物、放射性等項目要單獨采樣。同一采樣點，優先採集細菌監測項目水樣。
18現場測定湖庫水體的pH值、溶解氧時，應記錄測定水體的深度、測定時間、水溫和天氣情況等，以便解釋可能出現的pH值、溶解氧異常情況。
19受潮汐影響的監測斷面採集漲平潮位和退平潮位的水樣。為保證采樣安全，般應根據潮汐變化，選擇日間漲退潮時間完成采樣。漲潮水樣應在斷面處水面漲平時采樣，退潮水樣應在水面退平時采樣。
20每批水樣，應選擇部分項目加采現場空白樣，與樣品一起送實驗室分析。
21采樣時要認真填寫「水質采樣記錄表」，用簽字筆在現場記錄，字跡端正、清晰。項目完整。
22采樣結束前，應核對采樣計劃、記錄與水樣，如有錯誤或遺漏，應立即補采或重采。
23如采樣現場水體很不均勻，無法採到有代表性的樣品，則應詳細記錄不均勻的情況和實際采樣情況，供使用該數據者參考。答案來自
㈩ 測定水中微生物（包括細菌真菌等）數量的方法
器材及培養
材料和試劑
蒸餾水,自來水,取自兒童公園的湖水,牛肉膏蛋白腖瓊脂培養基.
儀器或其他用具
滅菌三角燒瓶,滅菌帶玻璃塞瓶,滅菌培養皿,滅菌吸管,滅菌量筒.
研究方法
採用平板菌落記數技術測定水中細菌總數.
水樣的採取
自來水
先將自來水水龍頭用火焰灼燒3min滅菌,再開放水龍頭5min後,以滅菌三角燒瓶接取水樣,以待分析.
公園的湖水
應取距水面10~15cm的深層水樣,先將滅菌的帶玻璃塞瓶,瓶口向下浸入水中,然後翻過來,除去玻璃
塞,水即流入瓶中,盛滿後,將瓶塞蓋好,再從水中取出,最好立即檢查,否則需放入冰箱中保存.
細菌總數的測定
自來水
Step1用滅菌吸管吸取1mL水樣,注入滅菌培養皿中.共做兩個平皿.
Step2分別傾注約15mL已溶化並冷卻到45e左右的肉膏蛋白腖瓊脂培養基.並立即在桌上做平面
旋搖,使水樣與培養基充分混勻.
Step3另取一個空的滅菌培養皿,傾注肉膏蛋白腖瓊脂培養基15mL,作對照.
Step4培養基凝固後,倒置與37e溫箱中,培養24h,進行菌落記數.
公園的湖水
Step1稀釋水樣,取三個滅菌空試管,分別加入9mL滅菌水.取1mL水樣注入第一管9mL滅菌水
內,搖勻,再自第一管取1mL到下一管滅菌水內,如此稀釋到第三管,稀釋度分別為10-1,10-2,10-3.
Step2自最後三個稀釋度的試管中各取1mL稀釋水加入空的滅菌培養皿,每一稀釋度共做兩個培養皿.
Step3各傾注15mL已溶化並冷卻到45e左右的肉膏蛋白腖瓊脂培養基並立即在桌上搖勻.
Step4凝固後倒置於37e恆溫恆濕培養箱中培養24h.
菌落記數方法
1)計算相同稀釋度的平均菌落數.若有大片菌苔生長時,棄用;以無片菌苔生長的培養皿記數.若片狀菌
苔大小不到培養皿的一半,其餘一半分布均勻,將此一半計數@2.
2)選擇平均菌落數在30~300之間的平板.只有一個符合此范圍時,以該平均菌落數@稀釋倍數.有兩
個在30~300之間時,按兩者菌落總數比值決定,比值小於2,取平均;比值大於2,取較小的菌落數.
3)若所有稀釋度的平均菌落數均大於300,則應按稀釋度最高的平均菌落數@稀釋倍數.
4)若所有稀釋度的平均菌落數均小於30,則按稀釋度的平均數@倍數.
5)若所有稀釋度的平均菌落數均不在30~300之間,則以最近30或300的平均菌落數@稀釋倍數.
微生物的含量能否反應水的營養化程度？
能
歡迎採納希望幫到你