微生物提取是什麼意思

① 微生物到底是什麼意思

微生物釋義：

形體微小、構造簡單的生物的統稱。絕大多數個體用顯微鏡才能看到，廣泛分布在自然界中，如細菌、立克次體、支原體、衣原體、病毒、單細胞藻類、原生動物等

人體內有兩個基因組，一個是從父母那裡遺傳來的人基因組，編碼大約2.5萬個基因；另一個則是出生以後才進入人體、特別是腸道內的多達1000多種的共生微生物，其遺傳信息的總和叫「微生物組」，也可稱為「宏/元基因組」，它們所編碼的基因有100萬個以上。

兩個基因組相互協調、和諧一致，保證了人體的健康。因此，在研究基因與人體健康關系時，一定不能忽略共生微生物基因的研究。

(1)微生物提取是什麼意思擴展閱讀：

微生物對水的處理

（1）廢水中的脫氮除磷，廢水中氮、磷是造成水體富營養化的根源，利用生物脫氮除磷已進行了廣泛的研究。生物脫氮中，有反硝化能力的微生物有變形桿菌、微球菌屬、假單胞菌屬、芽胞桿菌屬等。

（2） 廢水中有機物的降解，有機物的生物降解中，白腐菌是值得一提的。白腐菌是一類提子真菌，在廢水治理中，其降解污染物的范圍十分廣泛。

（3)廢水中重金屬的去除，由於藻類對重金屬離子具有較強的富集能力，利用其生物吸附作用可從工業污水中去除有毒、放射性金屬和回收稀有、貴重金屬。除了人工合成的有機汞制劑外，細菌具有合成甲基汞的能力，即生物甲基化，它會使汞的生物毒性大大增強。

而另一些微生物又可使甲基汞降解、還原，降低其毒性。該法具有高效、經濟、簡便、選擇性好等優點，尤其適用於低濃度及一般方法不易去除的金屬。

土壤的微生物修復與治理

工業的迅速發展，大量的人造化學物質排放到環境中，對資源和環境構成越來越嚴重的破壞。化石燃料的開采和使用，工業三廢的排放，給我們賴以生存的環境造成難以估量的污染。

土壤中的微生物，包括細菌、真菌、放線菌和藻類等，在它們中有一些具有農葯降解功能的種類。我們可以利用其特點，使細菌由於其生化上的多種適應能力和容易誘發突變菌株。

從而在農葯降解中佔有主要地位，例如假單胞菌對敵敵畏；麴黴菌、鐮孢黴菌對敵百蟲；芽孢桿菌、麴黴、青黴、假單胞桿菌、瓶型酵母等對甲胺磷。

② 生物發酵工程微生物提取

直接發酵法生產賴氨酸的主要微生物有谷氨酸棒狀桿菌、黃色短桿菌、乳糖發酵短桿菌的突變株等 3種
亮氨酸是用谷氨酸棒桿菌發酵，但用蛋白質水解法生產L一亮氨酸較多．

細菌分泌物、代謝產物是對身體有益，能維持和增進健康，這些細菌就是有益菌（益生菌）；細菌製造出腐敗物、毒素，企圖致病、致癌，那麼這些細菌就是有害菌;還有一些中間性菌，具有雙重性：既有好的生理作用，又有潛在的致病性，稱為雙向菌．

自然界的細菌都是混雜在一起的
可以用培養基分離
主要方法是平板法

③ 植物、動物、微生物DNA提取有什麼不同

主要在細胞破壁那兒有區別，然後在純化的時候不同材料的去除雜質的側重不同

④ 生物提取法和微生物發酵法的區別

這區別挺大的。
生物提取法是用物理或/和化學的方法，把生物組織中原先就有的某個或某些成分提取出來。
微生物發酵法是利用微生物中多種酶的作用，把原料中的某些成分轉化為另外的成分，然後再提取出來。
就是說，生物提取法中沒有化學變化，而微生物發酵法存在化學變化，

⑤ 微生物DNA提取的原理和方法是什麼

細菌染色體DNA的抽提
一、 目的
熟練掌握抽提細菌DNA的一般方法
二、原理
要進行重組DNA 實驗，就離不開外源基因的純化，而外源基因主要來源之一就要直接從生物的染色體DNA上制備，所以制備高質量的染色體DNA樣品經常為基因工程實驗所需要，抽提細菌染色體DNA的方法目前已有許多種，這里所介紹的兩種方法：一適用於枯桿菌染色體的抽提；另一種方法則適用於大腸桿菌染色體的制備。
基因工程實驗所需要的基因組DNA 通常要求分子量盡可能大，以此增加外源基因獲得率，但要獲得大片段的DNA 非易事，細菌基因組DNA通常是個很大的環狀態DNA，而在抽提過程中，不可避免的機械剪切力必將切斷DNA，如果要抽提到大的DNA 分子，就要盡可能地溫和操作，減少剪切力，減少切斷DNA 分子的可能性；分子熱運動也會減少所抽提到的DNA分子量，所以提取過程也要盡可能在低溫下進行。另外細胞內及抽提器皿中污染的核酸酶也會降解制備過程中的DNA，所以制備過程要抑制其核酸酶的活性。
另外製備的細菌染色體DNA 必須是高純度的，以滿足基因工程中各種酶反應的需要，制備的樣品必須沒有蛋白污染，沒有RNA，各種離子濃度應符合要求，這些在染色體制備時都應考慮到。
大腸桿菌染色體DNA 抽提首先收集對數生長期的細胞，然後用離子型表面活性劑十二烷基磺酸鈉（SDS）破裂細胞，SDS 具有的主要功能是：（1）溶解細胞膜上的脂類和蛋白質，因而溶解膜蛋白而破壞細胞膜；（2）解聚細胞膜上的脂類和蛋白質，有助於消除染色體DNA上的蛋白質；（3）SDS 能與蛋白質結合成為R1—0—SO3R2—蛋白質的復合物，使蛋白質變性而沉澱下來。但是SDS 能抑制核糖核酸酶的作用，所以在以後的提取過程中，必須把它除干凈。以免影響下一步RNase的作用。破細胞後RNA經RNase消化除去，蛋白質經苯酚、氯仿:異戊醇抽提除去經灑精沉澱回收DNA。枯草桿菌染色體制備與上類似，但略加修改的方法要適合教學要求。枯草桿菌是格蘭氏陽性菌，所以在SDS 處理前需要使用溶菌酶裂解細胞壁。溶菌酶是一種糖苷水解酶，它能水解菌體細胞壁的主要化學成份肽聚糖中的β—1，4 糖苷鍵，有助於細胞壁破裂，破裂的細胞壁在SDS 的作用下溶菌，同時用蛋白酶K 消化蛋白質，能解離纏繞在染色體DNA上的蛋白質，然後加入一定量的醋酸鉀，使蛋白質變性，通常離心除去，在這期間可加入核糖酸酶消化RNA，最後用乙醇回收DNA。
此二種方法抽提的細菌染色體DNA，無RNA和蛋白質污染，可用於限制性內切酶消化，分子再克隆等。但在下一步實驗前，要測定其DNA的濃度，常用測定DNA 濃度的方法，是溴化乙錠電泳法；當DNA 樣品在瓊脂糖凝膠中電泳時，加入的EB 會增強發射的熒光。而熒光的強度正比於DNA 的含量，如將已知濃度的標准樣品作電泳對照，就可估計出待樣品的濃度。
三、材料
（一）菌株
大腸桿菌C600、枯草桿菌BR151。
（二）儀器
電泳設備、恆溫水浴鍋、低速離心機、恆溫振盪器、紫外檢測儀。
（三）器皿
玻璃離心管（10 毫升）、移液管（10毫升、5毫升）、微量取樣器、燒杯、玻璃棒、試管、三角瓶
（四）試劑
（1）LB 完全肉湯培養液：1%蛋白腖 0.5%酵母粉 0.5%NaCl pH7.5。
（2）BY 培養液：1%蛋白腖 0.5%牛肉膏 0.5%酵母粉 0.5%葡萄糖 0.5%NaClpH7.5
（3）SET 溶液：20%蔗糖；50mmol/L Tris—HCl（pH7.6） 50mmol/L EDTA。
（4）20%SDS
（5）飽和酚
（6）氯仿:異戊醇（24:1 V:V）
（7）預冷無水酒精
（8）TE 溶液
（9）RNase溶液
（10）5mol/L 醋酸鉀
（11）蛋白酶K 20mg/ml
四、實驗步驟
1、取大腸桿菌C600單菌落於5 毫升LB培養液中，37℃振盪培養過液。
2、將上述菌液1%接種量接種於20 毫升LB 培養液中，37℃搖床振盪培養過夜。
3、已培養好的菌液，收集於10毫升的離心管中，在低速離心機上4000r/min離心10分鍾，去上清，留沉澱菌體。
4、用5 毫升的SET 溶液懸浮細胞，加入20% SDS 1毫升，37℃下輕搖過夜，使細胞裂解。
5、加入等體積的飽和酚，上下輕輕搖勻，放置5 分鍾後，在低速離心機上3500r/min離心10 分鍾。
6、取上相，加入1/2 體積的飽和酚，1/2體積的氯仿異:戊醇，上下翻轉均勻，3500r/min離心10 分鍾。
7、取上相，加入等體積的氯仿:異戊醇，如第6步，離心。
8、取上相於一干凈離心管中，另在一個50 毫升的燒杯中加入15毫升預冷無水酒精，把上述的上相液沿著玻棒慢慢倒入酒精中，並溫和地攪拌以使DNA 附著於玻棒上。
9、挑起DNA，再放於干凈的酒精中洗滌，然後把DNA溶於50 毫升TE 中，待測濃度。
（二）枯草桿菌染色體DNA 的抽提
1、在BY 斜面上劃線活化枯草桿菌BR151。
2、挑一環已活化的BR151 菌株於20 毫升的BY培養液中，37℃搖床振盪培養過液。
3、過夜培養物，收集10 毫升於離心管內，在低速離心機上3500r/min離心10 分鍾。
4、沉澱菌體加入0.75 毫升溶菌酶液（8 毫克溶菌酶/1毫升SET），振盪器上懸浮細胞，懸浮液移入1.5 毫升離心管，室溫30 分鍾。
5、在反應液中加入0.15毫升SDS溶液，蛋白酶K 溶液5 微升，37℃水浴10 分鍾後轉入75℃水浴5 分鍾。
6、加入5mol/L 醋酸鉀0.3 毫升，上下翻轉均勻，置於冰上30 分鍾，期間不時搖動。
於台式高速離心機離10000r/min10 分鍾。
7、上清液移入另一離心管，棄沉澱。重復第六步。
8、上清液移入5 毫升的離心管內，緩慢加入2倍體積的無水酒精，DNA呈絮狀沉澱。用一滅菌牙簽，挑起DNA 沉澱，溶於50微升TE中。待檢查濃度。
9、若無絮狀沉，則把其置-20℃冷凍3 小時（或-70℃冷凍30 分鍾），取出離心10 分鍾（10000rPm），去上清，晾乾，加入50ul TE溶解（取20ul 點樣測定）。
（三）染色體DNA 制備樣品濃度測定
1、按實驗一方法制備瓊脂糖凝膠（0.6%）
2、分別取標准濃度的λDNA 0.05ug、0.1ug、0.15ug、0.2ug，加相應的加樣緩沖液混合好，點樣。
3、取2 微升染色體DNA 樣品點樣(冷凍離心獲取的DNA樣品取50 微升點樣)，打開電泳儀電泳，待溴酚蘭進入凝膠2 厘米後，停止電泳，紫外燈下觀察，估計樣品DNA濃度。
五、結果討論與問題
紫外光下觀察DNA 樣品純度，計算出制備的DNA總量和濃度。
1、SDS 在抽提DNA 過程有哪幾個作用？
2、在本實驗中未加入RNase，那麼樣品中應出現什麼情況？

⑥ 瘤胃微生物的提取方法簡介和預處理

瘤胃微生物一般提取是平板劃線法分離，然後挑取菌落純化。
預處理你可以離心瘤胃液或者紗布過濾。我就做這方面的，有問題可以再問。

⑦ 微生物代謝產物的提取濃縮和鑒定

提取？有什麼現有設備嗎？比如說FAST之類的…大概過程就是提取，然後旋轉蒸發儀濃縮，最後定容下，最後HPLC就行了…我覺得GC不好用，如果不易氣化根本不可性…

⑧ 微生物DNA提取的方法有哪些

一、試劑准備
1.溶液Ⅰ:50mM葡萄糖,25mM Tris-HCl(pH 8.0),10mM EDTA(pH 8.0）.1M Tris-HCl(pH 8.0）12.5ml,0.5M EDTA（pH 8.0）10ml,葡萄糖4.730g,加ddH2O至500ml.在10 lbf/in2高壓滅菌15min ,貯存於4℃.
2.溶液Ⅱ：0.2N NaOH,1% SDS.2N NaOH 1ml,10%SDS 1ml,加ddH2O至10ml.使用前臨時配置.
3.溶液Ⅲ：醋酸鉀（KAc）緩沖液,pH 4.8.5M KAc 300ml,冰醋酸 57.5ml,加ddH2O至500ml.4℃保存備用.
4.TE：10mM Tris-HCl(pH 8.0),1mM EDTA(pH 8.0).1M Tris-HCl（pH 8.0）1ml,0.5M EDTA（pH 8.0）0.2ml,加ddH2O至100ml.15 lbf/in2高壓濕熱滅菌20min,4℃保存備用.
5.苯酚/氯仿/異戊醇（25：24：1）
6.乙醇（無水乙醇、70%乙醇）
7.5×TBE：Tris 鹼54g,硼酸27.5g,EDTA-Na2·2H2O 4.65g,加ddH2O 至1000ml.15 lbf/in2高壓濕熱滅菌20min,4℃保存備用.
8．溴化乙錠（EB）：10mg/ml
9.RNase A（RNA酶A）：不含DNA酶(DNase-free) RNase A的10mg/ml,TE配製,沸水加熱15min,分裝後貯存於-20℃.
10.6×loading buffer（上樣緩沖液）：0.25%溴酚藍,0.25%二甲苯青FF,40%（W/V）蔗糖水溶液.
11.1% 瓊脂糖凝膠：稱取1g瓊脂糖於三角燒瓶中,加100ml 0.5×TBE,微波爐加熱至完全溶化,冷卻至60℃左右,加EB母液（10mg/ml）至終濃度0.5μg/ml（注意：EB為強誘變劑,操作時帶手套）,輕輕搖勻.緩緩倒入架有梳子的電泳膠板中,勿使有氣泡,靜置冷卻30min以上,輕輕拔出梳子,放入電泳槽中（電泳緩沖液0.5×TBE）,即可上樣.

⑨ 植物，動物，微生物DNA提取有什麼不同

從提取的角度來說
1、樣本狀態不同，植物一般是葉片、種子；動物一般是組織、血液；微生物就各種各樣的都有
2、提取所用的試劑不同，不同樣本要用不同的試劑配方
3、提取步驟不同
可以考慮用DNA提取試劑盒，我們實驗室主要用吉恩特系列的，效果挺穩定

⑩ 提取DNA的方法在不同微生物間有何區別請具體舉例說明

DNA提取的幾種方法
(1).濃鹽法
利用RNP和DNP在電解溶液中溶解度不同,將二者分離,常用的方法是用1M 氯 納提取化鈉抽提,得到的DNP粘液與含有少量辛醇的 氯仿一起搖盪,使乳化,再離心除去蛋白質,此時蛋白質凝膠停留在水相及氯仿相中間,而DNA位於上層水相中,用2倍體積95%乙醇可將DNA 鈉鹽沉澱出來.
也可用0.15 MNaCL液反復洗滌細胞破碎液除去RNP,再以1MNaCL提取脫氧核糖蛋白,再按氯仿---異醇法除去蛋白.
兩種方法比較,後種方法使核酸降解可能少一些.
以稀鹽酸溶液提取DNA 時,加入適量去污劑,如SDS可有助於蛋白質與DNA 的分離.在提取過程中為抑制組織中的DNase對DNA 的降解作用,在氯化鈉溶液中加入檸檬酸鈉作為金屬離子的烙合劑.通常用.15MNaCL,0.015M檸檬鈉,並稱SSC溶液,提取DNA.
（2）.陰離子去污劑法:
用SDS或二甲苯酸鈉等去污劑使蛋白質變性,可以直接從生物材料中提取DNA .由於細胞中DNA與蛋白質之間常借靜電引力或配位鍵結合,因為陰離子去污劑能夠破壞這種價鍵,所以常用陰離子去污劑提取DNA.
（3）.苯酚抽提法:
苯酚作為蛋白變性劑,同時抑制了DNase的降解作用.用苯酚處理勻漿液時,由於蛋白與DNA 聯結鍵已斷,蛋白分子表面又含有很多極性基團與苯酚相似相溶.蛋白分子溶於酚相,而DNA溶於水相.離心分層後取出水層,多次重復操作,再合並含DNA 的水相,利用核酸不溶於醇的性質,用乙醇沉澱DNA .此時DNA是十分粘稠的物質,可用玻璃漫漫繞成一團,取出.此法的特點是使提取的DNA保持天然狀態 .
（ 4）.水抽提法:
利用核酸溶解於水的性質,將組織細胞破碎後,用低鹽溶液除去RNA,然後將沉澱溶於水中,使DNA充分溶解於水中,離心後收集上清液.在上清中加入固體氯化鈉調節至2.6M.加入2倍體積95%乙醇,立即用攪拌法攪出.然後分別用66% ٠80%和95%乙醇以及丙銅洗滌,最後在空氣中乾燥,既得DNA樣品.此法提取的DNA中蛋白質含量較高,故一般不用.為除蛋白可將此法加以改良,在提取過程中加入SDS.