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哈茨木霉微生物菌劑多少錢一袋

發布時間:2022-02-08 23:37:08

⑴ 哈慈木霉與哈茨木霉是同一種菌 哈慈木霉與哈茨木霉是同一種細菌嗎

我手頭的木霉書里沒有哈慈木霉之說.哈茨木霉和黑甲肉座菌是一種菌.

⑵ 關於哈茨木霉與根腐病!!!!!

我就來著重回答一下哈茨木霉這一塊兒吧。首先說一下菌劑挑選的問題,要選擇有效活性菌比較高的,因為有效活性菌才是真正起作用的菌含量,因為很多提取的菌會有伴種菌群。單菌和復合菌比較沒有意義。單位有效活菌數越高可以說在防治上才會更有保證,更多了解可以來匯恩生物了解一下,目前匯恩實驗室研發的哈茨木霉有效活菌數在20億/g以上。效果是比較有保證的,而且匯恩生物有自己的研發實研室,自主研發,自主生產,產品更正規,質量更有保證。

下面是哈茨木霉防治的一部分方法和注意事項,希望可以幫到您。

1、製作生物肥: 將1公斤木黴菌加入1000公斤有機肥中,(含水量f35%—40%)中混合,並攪拌均勻,堆制30—60厘米厚(視溫度情況情況確定薄厚,氣溫高可薄,氣溫低可厚),寬150厘米,長度不限,保持品溫40℃以下,常溫發酵5—7天即可。

2、農作物生產過程中使用,苗床淋噴:每平方米用2-4g葯劑,淋噴苗床上即可;蘸根:兌水稀釋20-80倍,然後蘸根或者球莖即可;盆栽及苗床混土:每立方米用菌劑110-220克,根據用水量先配置成母液,然後混勻即可;灌根:兌水稀釋1500-3000倍,每株澆灌200mL,根據植株的大小可以適當調節用量;噴霧後漫灌:畝用量100-200克,兌水300倍噴霧後漫灌,水量宜浸到根部為止;種子處理:每50kg種子用葯60-125g,先將半量的種子和菌劑混勻,然後再加入剩餘的種子及葯劑攪拌混勻即可,拌種是可以加入適量的水,以便於攪拌混勻。

【注意事項】

1、避免與化學肥料一起使用,以免影響微生物在土壤中的繁殖速度。

2、禁止與殺菌、蟲劑等化學農葯混合使用,以免造成菌體死亡。

3、最佳施用時間為早上或傍晚。勿使菌劑直接放置於強陽光下。

⑶ 微生物菌劑哈茨木霉燒苗嗎

所有的化肥之類的。要按比例使用。如果劑量超標,已經會燒苗的。

⑷ 咪鮮胺哈茨木霉一起使用嗎

這兩者的話是不可以一起使用的,他們彼此之間是有沖突的,建議你了解一下。

⑸ 哈茨木霉在發酵罐中發酵至最高濃度,再噴到麥麩上進行固體發酵的最終產物的濃度是多少

這個就要看你後來在麥麩上發酵的控制好壞了,決定最終產物濃度的有發酵溫度、濕度、pH值以及營養物,一般情況下控制的好的話在固體發酵後最終的產物濃度只有發酵罐最高濃度的80%左右了,如果控制條件不是很理想那麼最後可能就只有在發酵罐最高濃度的60%了,這個與控制條件密切相關。當然你所用的哈茨木霉不值到與我以前所用的是否是同一菌種,即便是同一個哈茨木霉也會有高低,因此我所說的不具可比性了,僅供參看,希望對你有所幫助,如果還有問題,可以留言給我,希望能幫你解決問題。

⑹ 哈茨木霉能預防什麼病害能用於草莓種植嗎

你好,哈茨木黴菌有分解降解作用,可以有效防治土傳性真jun病害,也可用於防止灰霉病。在草莓種植是可以用的。

一、哈茨木霉的主要作用

1、分解降解作用

哈茨木黴菌是產纖維素酶活性高的菌株之一,所產生的纖維素酶對作物秸稈有降解作用,並能強力分解粗纖維、木質素等大分子有機物,使其轉化為利於植物吸收利用的小分子物質,效果非常好。

2、防治病害

木黴菌素通過產生、營養競爭、微寄生、細胞壁分解酶素、以及誘導植物產生抗性等機制,對多種植物病原菌既有拮抗作用,又具有保護和雙重功效,可以有效防治土傳性真菌bing害,也可用於防止灰霉病。

3、競爭作用

哈茨木黴菌在植物的根圍、葉圍可以迅速生長,搶占植物體表面的位點,形成一個保護罩,阻止病原真菌接觸到植物根系及葉片表面,以此來保護作物根部,保證作物的健康成長。

二、草莓種植

1、花盆

栽種草莓盆景的時候大家需要選擇一個排水性比較好的花盆,建議購買排水孔比較多的花盆。草莓在生長過程中有足夠的空間,選擇的花盆不要太小;盆土建議選擇微酸的疏鬆土壤,草莓比較喜歡酸性的環境,可以選用海餐沃微生物菌劑調理土壤。

2、栽種

大家可以將准備好的草莓幼苗拿出來,先將其根系用水浸泡一個小時,之後將其放入盆中,並將其根系捋順,然後在填土將根系埋沒。

3、澆水

完成草莓栽種的工作之後,大家需要給草莓盆栽澆一次透水,如果澆水的過程中發現土壤的高度有所降低,可以適當像盆土添加一些土壤。

⑺ 哈慈木霉與哈茨木霉是同一種菌

我手頭的木霉書里沒有哈慈木霉之說。。。哈茨木霉和黑甲肉座菌是一種菌。。。

⑻ 哈茨木霉(T.harzianum)

根癌農桿菌介導的遺傳轉化法(Agrobacterium Tumefaciens-Mediated Transformation,ATMT)已被廣泛地應用於絲狀真菌的插入突變。以具有植物病害生物防治功能的T.harzianum LTR-2的分生孢子為實驗材料,研究建立了T.harzianum的高效ATMT插入技術(李國田等,2006)。該技術無須制備原生質體,具有操作簡單、轉化效率高和突變體遺傳穩定等特點,轉化效率約為200~300個/107分生孢子。通過繼代培養和PCR檢測,證明T-DNA中的潮黴素抗性基因插入木霉基因組中並可以隨著有絲分裂穩定遺傳。South-ern 雜交分析表明,T-DNA在木霉染色體上的插入位點是隨機的,並且大約有90%突變體的T-DNA 插入是單拷貝。利用上述 ATMT 突變技術,建立了T.harzianum菌株LTR-2的插入突變體庫。共得到具有潮黴素抗性的突變體400餘個,主要考察了以下性狀的變異情況:①形態變化:大部分菌落形態變化不大,具有明顯變化的約占總數的2%,分生孢子顏色也基本沒有變化,仍然為綠色,T1-25 突變體產生的分生孢子為黃褐色,但後期仍然顯出綠色,產孢量減少;②拮抗能力變化:突變體與立枯絲核菌(Rhizoctonia solani)進行平板對峙實驗,抑菌能力降低的約佔28%,增強的約佔56%,無變化的約佔16%;③重寄生能力變化:36.2%的突變體重寄生能力減弱,其中T4-59和T4-31幾乎喪失重寄生能力,51%的突變體增強。說明ATMT插入突變技術能夠造成原始菌株的隨機突變,是研究功能相關基因信息的有力工具,而該突變體庫的構建,為研究木霉的植病生防功能基因提供了豐富的種質資源。選擇重寄生能力較強、減弱和基本喪失的突變體 T2-58,T2-60,T1-25,T4-31,T4-59,以野生型LTR-2 為對照,以病原菌谷禾絲核菌(Rhizoctonia cerealis)為靶標,盆栽條件下測定了這些突變體對小麥紋枯病的生物防治活性,發現重寄生能力顯著減弱的突變體 T4-59和T4-31 對小麥紋枯病的防治效果明顯降低,約降低7%~13%,而重寄生能力明顯增強的菌株T2-58和T2-60則對病害的防治效果明顯增強,約增強10%~12%,說明木霉的重寄生能力與其生防活性密切相關。進一步的研究應利用這些突變體,探索與重寄生能力相關的基因信息。

5,6-二氫-6-戊基-2H-吡喃-2-酮(5,6-dihydro-6-penty-l2 H-pyran-2-one)是木黴菌產生的一種抗生素,具有椰子香味,生物活性高,對小麥紋枯病和棉花立枯病等多種植物病害都有顯著的防治效果,因此具有很大的潛在應用價值。通過土壤桿菌介導的T-DNA轉化方法,利用土壤桿菌菌株攜帶的Ti質粒,對綠色木霉LTR-2進行插入突變,獲得木霉LTR-2突變體共400株。以串珠鐮孢菌為指示菌,採用抑菌圈方法,從中篩選吡喃酮高產突變體6株,PCR和探針雜交證實,T-DNA序列已經插入木霉LTR-2基因組。經GC-MS分析發現,其中一株突變體T-54在PDA培養基上產生的吡喃酮含量較高,在分生孢子中的含量達到了2.62mg/g,比野生菌株提高9倍(扈進冬等,2010)。

利用T-DNA整合的方式,產生木黴菌突變體並進一步篩選的方式十分普遍。黃亞麗等(2010)通過對T.harzianum轉化效率的因素具體研究,建立了轉化效率高的體系,建立了含有8千多個轉化子的突變體庫。黃亞麗等(2010)還研究了整合過程中的機制,他們根據T.harzianum的基因組特點,採用12條隨機的AD引物,並分別與3條右邊界嵌套特異引物的組合對T.harzianum突變子的T-DNA側翼未知序列進行擴增,選出擴增效率最高的引物AD5,對T.harzianum的52個突變子進行Tail-PCR擴增,分析擴增序列後發現,獲得的42條側翼序列中,有7條只含有質粒序列,33條為單一的側翼序列,其餘2條的序列相同。其中34條T-DNA側翼邊界序列中1/3的序列保存著完整的右邊界,其餘則出現了不同程度的缺失,研究說明,在農桿菌介導轉化T.harzianum的過程中,會對T-DNA右邊界產生一定的剪切作用。

紫外誘變和化學誘變的方法也常被用於T.harzianum 針對性性狀篩選突變體系的構建。楊合同等(2004b)通過紫外線誘變處理,獲得了可以在低溫下(10e)生長的綠色木霉LTR-2的快速生長型突變株LR,以及對多菌靈具有抗性的突變株LRR。突變株對棉枯萎病菌、棉黃萎病菌、棉立枯病菌的平板拮抗能力一般低於野生型菌株。與野生型菌株相比,突變株在PDA平板上對棉花立枯病菌、枯萎病菌和黃萎病菌的抑菌圈都有變化,但是多數情況下抑菌圈變小而不是變大。LRR雖然對棉枯萎病菌和黃萎病菌的抑菌圈也較小,但是對兩種病害的防治效果卻略有提高。LR比LTR-2更能適合非根際土壤環境,而LRR在健康棉花根際的定殖能力上,比LTR-2有明顯下降。LR對棉花立枯病基本沒有防治效果,但對棉花黃萎病和枯萎病的防治效果則高於原始菌株;LRR對棉花上述3種病害的防治效果與原始菌株沒有明顯的差異。在PDA、玉米瓊脂和NA平板上菌株LR生長速度最快,而LRR則與野生型菌株LTR-2沒有明顯差別。除了突變株LR在非根際土壤中的定殖能力有所提高以外,其他突變株的根際定殖能力沒有明顯改善,LRR定殖能力反而明顯下降。該研究一方面表明紫外線誘變後目標性狀變化的隨機性,另一方面也說明定殖能力與抗葯性間沒有必然關系。紫外線誘變處理所獲得的新性狀容易消失,但也能夠得到穩定的突變株。對木霉來說,紫外線誘變仍然是值得利用的菌株改良技術,在擴大突變體篩選基數的基礎上,能夠獲得所需要的突變株。

Hassan等(2005)將 T.harzianum 暴露於伽馬射線中,誘導兩株耐鹽突變菌——Th50M6h和Th50M11。在鹽脅迫條件下,兩株突變體的生長能力、孢子形成能力、拮抗病原菌能力均遠超野生型。

安哲宇等(2010)通過紫外誘變和含葯培養基誘導相結合的方法,獲得了一株對三唑類殺菌劑有良好耐葯性的T.harzianum的突變體,TUV-13。其抗葯性為野生菌株的10倍,不同世代中的抗性比較穩定,且與原始菌株存在差異。該菌株可定殖於植物體內,植株生長產生正效應。楊春林等(2010)同樣採用紫外線誘變與葯劑培養馴化相結合的方法,構建了以T.harzianum Th-30為原始菌株的突變體。他們共得到4株可以比正常菌株耐受10倍福美雙的變異菌株。其中,變異菌株UV-4不僅能抵抗高濃度福美雙的脅迫作用,還具有幾丁質酶活性。該菌株遺傳性狀穩定,具有福美雙混用協同防治蔬菜真菌病害的功效。Zhang等(2013)的研究切入點側重在突變體木霉對作物的促生效果上。研究通過紫外線誘變的方法從親本SQR-T037菌株中得到124株突變體後代,並從中選擇了拮抗植物病原菌能力較強的T-E5進行下一步的研究。他們比較了T.harzianum突變體菌株T-E5與野生型菌株SQR-T037,同時以施用有機肥料作為對照。研究中包括實驗室和黃瓜溫室試驗,即對液體發酵液中植物激素的產出、對植物生長的促生能力和在植物根系根圍的定製能力進行了分析評定。結果顯示,T-E5相對SQR-T037,在植物生長素IAA的效率指標中提高了30.2%;相應的,T-E5處理顯著提高了黃瓜無論在土壤栽培還是水培條件下的生物量。通過RT-PCR檢測,在培養30d後,突變體T-E5在土壤樣品中的定殖量幾乎超過SQR-T037的10倍。兩菌株在植物根莖內的定殖速率幾乎是一致的;但每個取樣時間中T-E5的定殖率均高於野生型的SQR-T037。

木霉屬內及與其他真菌之間的原生質體融合,可為T.harzianum獲得更多的性狀功能。楊合同等(2005)以產孢量大,對苯菌靈有抗性,對潮黴素B敏感的T.harzianum菌株T9和產孢量少,對潮黴素B有抗性,對苯菌靈敏感的康寧木霉Tk7a為親本,通過原生質體融合,篩選獲得抗最高濃度殺菌劑的融合子。融合子產孢量高於Tk7a,水解酶活性比雙親號,並且在根際的競爭能力比T9強。張彩霞等(2004)對不同屬間原生質體融合進行了成功嘗試,他們構建了T.harzianum與鏈黴菌菌株原生質體融合技術。具體過程為將T.harzianum T-23與鏈黴菌菌株A分別以慶大黴素和50-53 e熱滅活120min作為遺傳標記。常規的聚乙二醇(PEG)作為融合系統的促融劑,通過調整PEG的最佳分子量及濃度和處理時間,最終確定0.05mol/L Ca2+的35%PEG6000為最佳融合系統,處理時間為15min。經過融合系統處理產生的融合子再經選擇再生培養基培養後,篩選形狀穩定的融合子。Srinicasan等(2009)希望通過原生質體融合的方法同時提高木霉中纖維素酶和幾丁質酶的含量。在他們的研究報告中,為了構建一株既含有上述雙酶特性的獨一無二的高效菌株,嘗試整合高纖維素酶產出活性的一株里氏木霉和高幾丁質酶產出活性的一株T.harzianum的原生質體。他們利用細胞溶解酶分別從16株T.harzianum和里氏木霉中分離得到了原生質體。原生質體融合系統採用的常規的PEG作為助融劑。融合反應共獲得20個生長效率高的融合子,緊接著通過抗性培養篩選,選出了六株具有良好的生長活性和拮抗活性的菌株。這六株篩選菌株自身也顯示了多層次的形態多樣性,包括菌絲發育、菌落顏色、分生孢子形成模式和孢子染色等。除了差異外,六個融合菌株仍具有與原始菌株相同的某些形態特徵。他們進一步通過PCR-PFLP驗證了融合子具有原始菌株雙親的特徵指紋條帶。從生長特性上看,三世代後,融合子後代的生長速率超過親本的60%~70%。更重要的是,融合子菌株比雙親菌株提高了40%~50%纖維素酶活性和10%~20%幾丁質酶的活性,並且具有高於雙親7%~8%的生物拮抗活性。

Herrera等(2012)比較了T.harzianum突變菌株和野生型菌株對殺菌劑敏感性的不同。他們將野生型T.harzianum(Th11,Th12和Th650)和突變體T.harzianum(Th11 A80.1,Th12 A10.1和Th650-NG7)同時暴露在不同的商用殺菌劑中進行研究。研究結果顯示,所有的野生和突變體菌株均能在含有濃度為1700mg/L戊菌隆的條件下出芽。野生型菌株Th12和Th650及對應的突變體菌株Th12 A10.1和Th650-NG7均對不同濃度梯度的撲海因和代森錳有葯敏反應。這些研究成果為T.harzianum特定突變體菌株在實際作用時,可否與抗菌劑聯合施用,可施用的范圍、水平等做了有意義的評估工作。

⑼ 礦源黃腐酸鉀,枯草芽孢桿菌和哈茲木黴菌這三樣能混用嗎,如果混用可不可以用在草莓上

礦源黃腐酸鉀是一種有機質,而枯草芽孢桿菌和哈茲木黴菌好一點的廠家,通常會把幾大類菌群放在一起稱為微生物菌劑,二者各有好處,用一種就可以了,沒有必要兩個都用的,有點浪費哈。

草莓屬於淺根系作物,而草莓的根系是比較「金貴」的,如果施肥不合理易傷根。

草莓全程施肥要點


基肥

草莓定植前,需施足基肥。應以有機肥料為主,配合施用宴沃含氨基酸平衡水溶肥,無激素、溶解快、吸收利用率高,由於草莓根部病害較多,建議再加入宴沃微生物菌劑,含菌20億,營養賽燕窩,以壯大土壤中的有益菌群,改善土壤板結嚴重、酸鹼失調的症狀,減少病害的發生。

追肥

定植至休眠期:灌足定根水,促進緩苗,為促進根系生長,可施里貝里根享生根劑,天然植物激素,促進草莓根系健康生長。

休眠後至花前:控氮、增施磷、鉀及鈣、鎂、硼、鋅等中微量元素,以促進花芽分化。

孕花期:磷、鉀肥增多,但氮肥也同樣重要,氮肥能防止植株早衰,增加中後期產量,但要注意施用量,施用過量草莓旺長。

坐果後至採收:鉀肥為主,輔以磷、鎂、鈣、鋅等中微量元素,最好搭配宴沃氨基酸水溶肥一起用,可施宴沃氨基酸高鉀水溶肥(含44個鉀,草莓膨果更大、更快)+平衡水溶肥,促果膨大,提升品質,防止早衰。

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