5ml浮游生物計數框怎麼求密度

Ⅰ 如何調查浮游生物種群密度

抽樣檢測法這個不記得具體的了. 標志重捕法和樣方法是調查 種群密度的方法取樣器取樣法是用來調查土壤小動物的種類時的取樣方法目測估計法和記名統計法 是調查土壤小動物的時候 具體計數的方法.一個准確一個模糊. 顯微計數法 是在顯微鏡下觀察並計算某種微生物的數量的方法. 稀釋塗布平板法是用稀釋後 在培養基上形成 菌落的方法來計算 細菌等微生物的數量的方法；

Ⅱ 如何調查浮游生物種群密度

對浮游生物這類原生動物和藻類計數一般採用PFU（聚氨酯塑料泡沫塊）方法。製作固定大小的泡沫塊在各采樣位置懸掛一定時間後將樣品取出現場用顯微鏡對活體種類進行觀察鑒定和計數從而得到指定種的種群密度。

Ⅲ 為什麼浮游植物原生動物可以用相同的方法測定

為什麼浮游植物原生動物可以用相同的方法測定
一、采?集 採集水體中的浮游動物有兩種方法：一為用采 水器采水後沉澱分離；
二、沉澱和濾縮?把水樣中的浮游動物濃縮一般採用沉澱和濾縮的方法。
三、計數?進行浮游動物計數的主要儀器是顯微鏡和計數 框，計數原生動 物用0.1毫升

Ⅳ 發生赤潮時浮游生物的密度

發生赤潮時的浮游生物的密度一般是102—106細胞/毫升。
赤潮，又稱紅潮，國際上也稱其為「有害藻類」或「紅色幽靈」。是在特定的環境條件下，海水中某些浮游植物、原生動物或細菌爆發性增殖或高度聚集而引起水體變色的一種有害生態現象。赤潮並不一定都是紅色，主要包括淡水系統中的水華，海洋中的一般赤潮，近幾年新定義的褐潮（抑食金球藻類），綠潮（滸苔類）等。
「赤潮」，是海洋生態系統中的一種異常現象。它是由海藻家族中的赤潮藻在特定環境條件下爆發性地增殖造成的。海藻是一個龐大的家族，除了一些大型海藻外，很多都是非常微小的植物，有的是單細胞生物。根據引發赤潮的生物種類和數量的不同，海水有時也呈現黃、綠、褐色等不同顏色。
赤潮是伴隨著浮游生物的驟然大量增殖而直接或間接發生的現象。本來是漁業方面的用語，並沒有嚴格的定義。水面發生變色的情況甚多，厄水（海水變綠褐色）、苦潮（按即赤潮，海水變赤色）、青潮（海水變藍色）及淡水中的水華，都是同樣性質的現象。構成赤潮的浮游生物種類很多，但甲藻、硅藻類大多是優勢種。當發生赤潮時的浮游生物的密度一般是102—106細胞/毫升。
形成原因
浮游生物
所謂海洋浮游生物是缺乏發達的運動器官，沒有或僅有微弱的游泳能力而懸浮在水層中常隨水流移動的一類海洋生物。其中，能通過自身光合作用使海水中的無機化合物轉化成生物新陳代謝所需有機化合物者，我們稱之為浮游植物，不具備這種能力，即必須以浮游植物為餌者則稱為浮游動物。據初步統計，世界各大洋中能形成赤潮的浮游生物有180餘種，其中在中國浮游生物名錄上登載的有63種。
能夠形成赤潮的浮游生物有一個別名，這就是人們常說的「赤潮生物」。在被稱之為赤潮生物的63種浮游生物中，硅藻有24種，甲藻32種，藍藻3種，金藻1種，隱藻2種，原生動物1種。在中國，已有赤潮資料記載的赤潮生物達25種。其餘的38種在中國海域均有分布，只是尚未形成過赤潮而已。因此說，有赤潮生物分布的海域並非一定會發生赤潮，這要看其密度能否達到足以使局部海域水體變色的水平。
人類活動
隨著現代化工、農業生產的迅猛發展，沿海地區人口的增多，大量工農業廢水和生活污水排入海洋，其中相當一部分未經處理就直接排入海洋，導致近海、港灣富營養化程度日趨嚴重。同時，由於沿海開發程度的增高和海水養殖業的擴大，也帶來了海洋生態環境和養殖業自身污染問題；海運業的發展導致外來有害赤潮種類的引入；全球氣候的變化也導致了赤潮的頻繁發生。海水養殖的自身污染亦是誘發赤潮的因素之一。

Ⅳ 當發生赤潮時的浮游生物的密度一般是什麼

當發生赤潮時的浮游生物的密度一般是每毫升102到106細胞。赤潮是伴隨著浮游生物的驟然大量增殖而直接或間接發生的現象。本來是漁業方面的用語並沒有嚴格的定義，水面發生變色的情況甚多，厄水海水變綠褐色，苦潮按即赤潮海水變赤色。

赤潮浮游生物特點

赤潮是海洋生態系統中的一種異常現象，它是由海藻家族中的赤潮藻在特定環境條件下爆發性地增殖造成的，海藻是一個龐大的家族，除了一些大型海藻外，很多都是非常微小的植物，有的是單細胞生物。

赤潮是一種復雜的生態異常現象，發生的原因也比較復雜，關於赤潮成因尚沒有定論，科學家們認為，赤潮是近岸海水受到有機物污染所致，在正常的情況下，海洋中的營養鹽含量較低，這就限制了浮游植物的生長有些鞭毛蟲類或者甲藻類還是一些魚蝦的食物。

Ⅵ 浮游植物的數量和生物量是怎麼計算的

浮游植物的現存量，指的是某一瞬間單位水體中所存在的浮游植物的量。這個量有兩種表示方法，用數目單位表示成為密度，一般用萬個／升為單位，五、六十年代用之；用重量單位（mg/L）表示的現存量稱為生物量（Biomass），70年代以來被廣泛使用。

一升水中的浮游植物的數量（N）可用下列公式計算：

）可視為常數，此常數用K表示，則上述公式可簡化為：N=K×Pn。Pn代表某種藻類的個數，計算結果N只表示一升水中這種藻類的數量；Pn若代表各種藻類的總數，計算結果N則表示一升水中浮游植物的總數。前者若求浮游植物數量將各計算結果相加即可。

Ⅶ 調查湖泊中藻類種群密度的常用方法

血球計數法可以，我們採用的是，隨機取一定容量的水，用葯物處理後沉澱，經過一定程序處理後取沉澱物計數，或者有離心機什麼的，還有兩種方法我不記得了，這種實驗我們都只做過一次，實踐中不怎麼用.

Ⅷ 當發生赤潮時的浮游生物的密度一般是多少

當發生赤潮時的浮游生物的密度一般是102—106細胞/毫升。

赤潮是伴隨著浮游生物的驟然大量增殖而直接或間接發生的現象。本來是漁業方面的用語，並沒有嚴格的定義。水面發生變色的情況甚多，厄水（海水變綠褐色）、苦潮（按即赤潮，海水變赤色）、青潮（海水變藍色）及淡水中的水華，都是同樣性質的現象。

構成赤潮的浮游生物種類很多，但甲藻、硅藻類大多是優勢種。當發生赤潮時的浮游生物的密度一般是102—106細胞/毫升。在日本近海淡水流入的內灣，自春至秋均有發生。

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赤潮是一種復雜的生態異常現象，發生的原因也比較復雜。關於赤潮成因尚沒有定論，科學家們認為，赤潮是近岸海水受到有機物污染所致。

在正常的情況下，海洋中的營養鹽含量較低，這就限制了浮游植物的生長（有些鞭毛蟲類（或者甲藻類）還是一些魚蝦的食物）。

但是，當含有大量營養物質的生活污水、工業廢水(主要是食品、造紙和印染工業)和農業廢水流入海洋後，再加上海區的其他理化因素有利於生物的生長和繁殖時，赤潮生物便會急劇繁殖起來，便形成赤潮。

Ⅸ 浮游植物定量及葉綠素a 測定

2.4.2.1 浮游植物定量

個體計數仍是目前常用的浮游生物定量方法。計數浮游生物時，需使用計數框來限定待計數樣品的體積或面積，計數框的長、寬、高 (深) 用測微尺或卡尺准確測量。常用計數框有0.1 mL 和1 mL 兩種。計數前要將樣品充分搖勻，然後用滴管在水樣中部吸液移入計數框內。移入之前要將蓋玻片斜蓋在計數框上，樣品按准確定量注入，在計數框中一邊進樣，另一邊出氣，這樣可避免氣泡產生，注滿後把蓋玻片移正。計數片子製成後，稍候幾分鍾，讓浮游植物沉至框底，然後計數。不易下沉到框底的生物，則要另行計數，並加到總數之內。浮游植物計數時，吸取 0.1 mL 樣品注入 0.1 mL 計數框，在 10 × 40 或8 × 40倍顯微鏡下計數，藻類計數 200 個視野，計數兩片取其平均值。如兩片計數結果個數相差 15%以上，則進行第三片計數，取其中個數相近的兩片平均值。

藻類計數亦可用長條計數法，選取兩相鄰刻度從計數框的左邊計數到計數框的右邊成為一個長條。在長條計數法時，方格的底邊和頂邊分別為計數邊和不計數邊，統計移過中心垂線的浮游生物。與底邊刻度相交的個體，應計數在內，與頂邊相交的個體，不計入在內，與底邊和頂邊刻度都相交的個體，以生物體的中心位置作為判斷的標准，也可以在低倍鏡下，按上述原則單獨計數，最後加入總數之中。計數時，首先旋轉目鏡的位置使中心線與計數框的一邊重疊，再移動載物台，逐步計數。也可用直尺式目鏡測微尺進行長條計數，即直尺相當於中心垂線，頂端刻度相當於頂邊，底端刻度相當於底邊。一般計數 3條，即第 2、5、8 條，若藻體數量太少，則應全片計數。硅藻細胞破殼不計數，硅藻細胞空殼可按中心綱和羽紋綱分別單獨計數，但不加入總數之中，僅用於硅藻計數的校正。若計數種屬的組成，分類計數200個藻體以上。用劃「正」字的方法，則每劃代表一個個體，記錄每個種屬的個體數。個體計數時，單細胞者一個細胞為一個體，定形群體者一群為一個體，不定形群體者按視野內的具體分散狀態各定為一個體。本書研究採用長條計數法。

把計數所得結果按下式換算成每升水中浮游植物的數量:

煤礦塌陷塘環境生態學研究

式中:N為每升水中浮游植物的數量(ind/L);A為計數框面積;A_C為計數面積(mm²)，即視野面積×視野數或長條長度×參與計數的長條寬度×鏡檢的長條數;V_W為1L水樣經沉澱濃縮後的樣品體積(mL);V為計數框體積(mL);n為計數所得的浮游植物的個體數或細胞數。

2.4.2.2 葉綠素a測定

葉綠素是植物光合作用中的重要光合色素。通過測定浮游植物葉綠素a，可掌握水體的初級生產力情況。在環境監測中，可將葉綠素a含量作為湖泊富營養化指標之一。

(1)水樣的採集與保存

可根據工作需要進行分層采樣或混合採樣。湖泊、水庫采樣500mL，池塘300mL，采樣量視浮游植物量而定，若浮游植物數量較少，也可采樣1000mL。采樣點及采樣時間同「浮游植物」。

水樣採集後放在陰涼處，避免日光直射。並立即進行測定前的預處理，如需經過一段時間(4～48h)方可進行預處理，則將水樣保存在低溫(0～4℃)避光處。在每升水中加入1%碳酸鎂懸濁液1mL，以防止酸化引起色素溶解。水樣在冰凍情況下(-20℃)最長可以保存30d。

(2)儀器設備

進行葉綠素a的測定時，所需的儀器設備有:分光光度計、真空泵、離心機、乙酸纖維濾膜(孔徑0.45um)、抽濾器、組織研磨器或其他細胞破碎器、碳酸鎂粉末、90%丙酮。

(3)實驗步驟

1)以離心或過濾濃縮水樣，在抽濾器上裝好乙酸纖維濾膜。倒入定量體積的水樣進行抽濾，抽濾時負壓不能過大(約為50kPa)。水樣抽完後，繼續抽1～2min，以減少濾膜上的水分。如需短期保存1～2d，可放入普通冰箱冷凍，如須長期保存(30d)，則放入低溫冰箱(-20℃)保存。

2)取出帶有浮游植物的濾膜，在冰箱內低溫乾燥6～8h後放入組織研磨器中，加入少量碳酸鎂粉末及2～3mL的90%丙酮，充分研磨，提取葉綠素a。用離心機(3000～4000r/min)離心10min，將上清液倒入5mL或10mL容量瓶中。

3)再用2～3mL的90%的丙酮，繼續研磨提取，離心10min，並將上清液再轉入容量瓶中。重復1～2次，用90%的丙酮定容為5mL或10mL，搖勻。

4)將上清液在分光光度計上，用1cm光程的比色皿，分別讀取750nm、663nm、645nm、630nm波長的吸光度，並以90%的丙酮作空白吸光度測定，對樣品吸光度進行校正。即以663nm、645nm、630nm波長的吸光度依次減去750nm的吸光度，作為這3個波長的真正吸光度。

(4)計算方法

葉綠素a的含量按如下公式計算:

葉綠素a(mg/L)=

煤礦塌陷塘環境生態學研究

式中:D為吸光度;V₁為提取液定容後的體積(mL);V為水樣體積(L);δ為比色皿光程(cm)。

Ⅹ 0.05ml浮游動物計數框怎麼計數

把您的產品圖片傳上來，我幫您看看呢。國內一般浮游動物計數是2種計數框：1毫升計數框計數甲殼類0.1毫升計數框計數原生動物（樣品處理同浮游植物一起即可），5毫升或10毫升偶爾用。