浮游生物計數框計數法怎麼用

Ⅰ 0.05ml浮游動物計數框怎麼計數

把您的產品圖片傳上來，我幫您看看呢。國內一般浮游動物計數是2種計數框：1毫升計數框計數甲殼類0.1毫升計數框計數原生動物（樣品處理同浮游植物一起即可），5毫升或10毫升偶爾用。

Ⅱ 如何調查浮游生物種群密度

對浮游生物這類原生動物和藻類計數一般採用PFU（聚氨酯塑料泡沫塊）方法。製作固定大小的泡沫塊在各采樣位置懸掛一定時間後將樣品取出現場用顯微鏡對活體種類進行觀察鑒定和計數從而得到指定種的種群密度。

Ⅲ 浮游植物定量及葉綠素a 測定

2.4.2.1 浮游植物定量

個體計數仍是目前常用的浮游生物定量方法。計數浮游生物時，需使用計數框來限定待計數樣品的體積或面積，計數框的長、寬、高 (深) 用測微尺或卡尺准確測量。常用計數框有0.1 mL 和1 mL 兩種。計數前要將樣品充分搖勻，然後用滴管在水樣中部吸液移入計數框內。移入之前要將蓋玻片斜蓋在計數框上，樣品按准確定量注入，在計數框中一邊進樣，另一邊出氣，這樣可避免氣泡產生，注滿後把蓋玻片移正。計數片子製成後，稍候幾分鍾，讓浮游植物沉至框底，然後計數。不易下沉到框底的生物，則要另行計數，並加到總數之內。浮游植物計數時，吸取 0.1 mL 樣品注入 0.1 mL 計數框，在 10 × 40 或8 × 40倍顯微鏡下計數，藻類計數 200 個視野，計數兩片取其平均值。如兩片計數結果個數相差 15%以上，則進行第三片計數，取其中個數相近的兩片平均值。

藻類計數亦可用長條計數法，選取兩相鄰刻度從計數框的左邊計數到計數框的右邊成為一個長條。在長條計數法時，方格的底邊和頂邊分別為計數邊和不計數邊，統計移過中心垂線的浮游生物。與底邊刻度相交的個體，應計數在內，與頂邊相交的個體，不計入在內，與底邊和頂邊刻度都相交的個體，以生物體的中心位置作為判斷的標准，也可以在低倍鏡下，按上述原則單獨計數，最後加入總數之中。計數時，首先旋轉目鏡的位置使中心線與計數框的一邊重疊，再移動載物台，逐步計數。也可用直尺式目鏡測微尺進行長條計數，即直尺相當於中心垂線，頂端刻度相當於頂邊，底端刻度相當於底邊。一般計數 3條，即第 2、5、8 條，若藻體數量太少，則應全片計數。硅藻細胞破殼不計數，硅藻細胞空殼可按中心綱和羽紋綱分別單獨計數，但不加入總數之中，僅用於硅藻計數的校正。若計數種屬的組成，分類計數200個藻體以上。用劃「正」字的方法，則每劃代表一個個體，記錄每個種屬的個體數。個體計數時，單細胞者一個細胞為一個體，定形群體者一群為一個體，不定形群體者按視野內的具體分散狀態各定為一個體。本書研究採用長條計數法。

把計數所得結果按下式換算成每升水中浮游植物的數量:

煤礦塌陷塘環境生態學研究

式中:N為每升水中浮游植物的數量(ind/L);A為計數框面積;A_C為計數面積(mm²)，即視野面積×視野數或長條長度×參與計數的長條寬度×鏡檢的長條數;V_W為1L水樣經沉澱濃縮後的樣品體積(mL);V為計數框體積(mL);n為計數所得的浮游植物的個體數或細胞數。

2.4.2.2 葉綠素a測定

葉綠素是植物光合作用中的重要光合色素。通過測定浮游植物葉綠素a，可掌握水體的初級生產力情況。在環境監測中，可將葉綠素a含量作為湖泊富營養化指標之一。

(1)水樣的採集與保存

可根據工作需要進行分層采樣或混合採樣。湖泊、水庫采樣500mL，池塘300mL，采樣量視浮游植物量而定，若浮游植物數量較少，也可采樣1000mL。采樣點及采樣時間同「浮游植物」。

水樣採集後放在陰涼處，避免日光直射。並立即進行測定前的預處理，如需經過一段時間(4～48h)方可進行預處理，則將水樣保存在低溫(0～4℃)避光處。在每升水中加入1%碳酸鎂懸濁液1mL，以防止酸化引起色素溶解。水樣在冰凍情況下(-20℃)最長可以保存30d。

(2)儀器設備

進行葉綠素a的測定時，所需的儀器設備有:分光光度計、真空泵、離心機、乙酸纖維濾膜(孔徑0.45um)、抽濾器、組織研磨器或其他細胞破碎器、碳酸鎂粉末、90%丙酮。

(3)實驗步驟

1)以離心或過濾濃縮水樣，在抽濾器上裝好乙酸纖維濾膜。倒入定量體積的水樣進行抽濾，抽濾時負壓不能過大(約為50kPa)。水樣抽完後，繼續抽1～2min，以減少濾膜上的水分。如需短期保存1～2d，可放入普通冰箱冷凍，如須長期保存(30d)，則放入低溫冰箱(-20℃)保存。

2)取出帶有浮游植物的濾膜，在冰箱內低溫乾燥6～8h後放入組織研磨器中，加入少量碳酸鎂粉末及2～3mL的90%丙酮，充分研磨，提取葉綠素a。用離心機(3000～4000r/min)離心10min，將上清液倒入5mL或10mL容量瓶中。

3)再用2～3mL的90%的丙酮，繼續研磨提取，離心10min，並將上清液再轉入容量瓶中。重復1～2次，用90%的丙酮定容為5mL或10mL，搖勻。

4)將上清液在分光光度計上，用1cm光程的比色皿，分別讀取750nm、663nm、645nm、630nm波長的吸光度，並以90%的丙酮作空白吸光度測定，對樣品吸光度進行校正。即以663nm、645nm、630nm波長的吸光度依次減去750nm的吸光度，作為這3個波長的真正吸光度。

(4)計算方法

葉綠素a的含量按如下公式計算:

葉綠素a(mg/L)=

煤礦塌陷塘環境生態學研究

式中:D為吸光度;V₁為提取液定容後的體積(mL);V為水樣體積(L);δ為比色皿光程(cm)。

Ⅳ 如何調查浮游生物種群密度

抽樣檢測法這個不記得具體的了. 標志重捕法和樣方法是調查 種群密度的方法取樣器取樣法是用來調查土壤小動物的種類時的取樣方法目測估計法和記名統計法 是調查土壤小動物的時候 具體計數的方法.一個准確一個模糊. 顯微計數法 是在顯微鏡下觀察並計算某種微生物的數量的方法. 稀釋塗布平板法是用稀釋後 在培養基上形成 菌落的方法來計算 細菌等微生物的數量的方法；

Ⅳ 為什麼浮游植物原生動物可以用相同的方法測定

為什麼浮游植物原生動物可以用相同的方法測定
一、采?集 採集水體中的浮游動物有兩種方法：一為用采 水器采水後沉澱分離；
二、沉澱和濾縮?把水樣中的浮游動物濃縮一般採用沉澱和濾縮的方法。
三、計數?進行浮游動物計數的主要儀器是顯微鏡和計數 框，計數原生動 物用0.1毫升

Ⅵ 浮游植物的數量和生物量是怎麼計算的

浮游植物的現存量，指的是某一瞬間單位水體中所存在的浮游植物的量。這個量有兩種表示方法，用數目單位表示成為密度，一般用萬個／升為單位，五、六十年代用之；用重量單位（mg/L）表示的現存量稱為生物量（Biomass），70年代以來被廣泛使用。

一升水中的浮游植物的數量（N）可用下列公式計算：

）可視為常數，此常數用K表示，則上述公式可簡化為：N=K×Pn。Pn代表某種藻類的個數，計算結果N只表示一升水中這種藻類的數量；Pn若代表各種藻類的總數，計算結果N則表示一升水中浮游植物的總數。前者若求浮游植物數量將各計算結果相加即可。

Ⅶ 用來測定細菌生長量的直接計數法和間接計數法包含哪些具體的方法

顯微鏡直接計數法和稀釋平板計數法是測定微生物數量的常用方 法。 直接計數法中常用的是顯微鏡直接計數法，這種方法是先將待 測樣品製成懸液，然後取一定量的懸液放在顯微鏡下進行計數(圖1- 3-1)。根據在顯微鏡下觀察到的微生物數目來計算出單位體積內的微 生物總數。直接計數法所需設備簡單，可迅速得到結果，而且在計數 的同時能觀察到所研究微生物的形態特徵，其缺點是難以計數微小的 細菌。這種方法一般適用於純培養懸浮液中各種單細胞菌體的計數。 間接計數法最常用的是稀釋平板計 數法，它是根據微生物的培養特徵而設計 的計數方法。這種方法在樣品中含菌數較 少的情形下，也可以完成計數。 應用稀釋平板計數法計數時，需要 將待測樣品配製成均勻的系列稀釋液，盡 量使樣品中的微生物細胞分散開。再取一 定稀釋度、一定量的稀釋液接種到平板 中，使其均勻分布於平板中的培養基內； 或是將一定量的稀釋液，與溶化後冷卻至 45℃左右的瓊脂培養基混合，傾入無菌培 養皿中，搖勻、靜置待凝。經過培養後， 就由單個微生物生長繁殖形成菌落，這樣 的一個菌落就代表著一個微生物個體。統 計培養基中出現的菌落數，即可推算出檢 測樣品中的活菌數。 FOR EXAMPLE:] 土壤中好氣性細菌的計數 土壤中生活的微生物種類和數量是極其豐富的，這些數量眾多的 微生物對提高土壤肥力有重要作用。因此，測定土壤中的含菌量可以 作為判定土壤肥力的一個重要指標。 材料器具 土壤樣品；牛肉膏蛋白腖瓊脂培養基(附錄二)、無菌水；培養皿、 移液管、天平、錐形瓶、試管、酒精燈、恆溫培養箱、搖床等。 活動程序 1.制備土壤稀釋液 取土壤表層5～10 cm 處的土樣。准確稱取1 g 土樣，放入盛有 99 mL 無菌水的錐形瓶(250 mL，放有小玻璃珠)中，用手或搖床振盪 20 min，即製成102 倍的稀釋液。 用1 mL無菌移液管，吸取10 2倍稀釋液0.5 mL，移入裝有4.5 mL 無菌水的試管中，配製成103 倍稀釋液。 用同樣的方法可製成稀釋倍數為104、105、106 的系列稀釋菌液 (圖1-3-2)。 圖 移液時，要將移液管插入液面，吹吸3 次，每次吸上的液面要高 於前一次，讓菌液混合均勻並減少稀釋中的誤差。每配一個稀釋度要 換用一支移液管。 2.取樣及倒平板 將無菌培養皿編號，依次為104、105、106，每一號碼設置三個 重復。 用無菌移液管三支，分別吸取稀釋倍數為104、105、106的土壤稀釋 液各0.2 mL，注入到相應編號的培養皿中(每個稀釋倍數各三個培養皿)。 將已滅菌牛肉膏蛋白腖瓊脂培養基溶化，待冷卻至45～50 ℃左 右，傾入到無菌培養皿中，每皿約15 mL，輕輕轉動培養皿，使土壤 稀釋液與培養基混合均勻。 3.培養 將上述接種好的平板培養基冷卻後，倒置放入28～30 ℃的恆溫 培養箱中培養24～36 h，直至長出菌落為止。 4. 觀察記錄 將實驗中得到的菌落數填入表1-3-1。 結果分析 1.選取具有合適菌落數的稀釋倍數並計數。 在計算結果時，從接種的3 個稀釋度中選擇一個合適稀釋倍數， 統計出菌落數(圖1-3-3)。選擇的原則是： 過 (1) 細菌、放線菌、酵母菌以每個培養皿內有30～300 個菌落為 宜。黴菌以每個培養皿內有10～100 個菌落為宜。 (2) 同一稀釋倍數各個重復的菌落數相差不太懸殊。 2.將統計出的菌落數按下列公式計算，得出每克樣品菌數。 每克土壤樣品菌數= 某稀釋倍數的菌落平均數×稀釋倍數

Ⅷ 調查湖泊中藻類種群密度的常用方法

血球計數法可以，我們採用的是，隨機取一定容量的水，用葯物處理後沉澱，經過一定程序處理後取沉澱物計數，或者有離心機什麼的，還有兩種方法我不記得了，這種實驗我們都只做過一次，實踐中不怎麼用.