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微生物測序結果在什麼網站比對

發布時間:2023-02-16 11:25:40

㈠ 測序出來的序列,在NCBI網站上比對相似度,尋找相似度100%或99%的是為了分析什麼

找到你測的序列是什麼物種,如果是100%,說明你測的這個物種就是你在NCBI上找到的這個。

㈡ 測序得到基因序列後如何分析呢 都需要用什麼軟體啊 新手 拜託高人指點下 什麼都不會 求死啊!!

測序得到基因序列後一般都需要進行序列比對,看和目的序列的差異情況,常用的軟體有DNAman,還有invitrogen的vectorVI也不錯。此外還可以直接在網上進行比對,推薦NCBI網站的BLAST可以直接網上進行。

不用擔心,多熟悉幾遍就可以操作了,很簡單的,要對自己有信心,加油!

㈢ 如何用分子生物學的方法鑒定微生物

可以用16s rDNA的通用引物,對細菌的16s rDNA進行PCR, 然後測序,得到序列片段之後,在GenBank或者其他的數據網站進行比對,就可以得出微生物的種屬。

㈣ 16srRNA的測序結果怎麼分析啊謝謝!!!!!

原核生物的30S核糖體亞基中含有16S rRNA.16S rRNA的相對分子質量約為0.6 MDa,長度約為1540 nt.在30S核糖體亞基組裝過程中,16S rRNA與其核糖體蛋白質S4、S7、S8、S15、S17和S20結合先行成初級復合物.
16S rRNA約有一半的核苷酸形成鏈內鹼基對,使其具有約60個螺旋;分子中未配對部分則形成突環.在濃度足夠的Mg2+存在下分離得到的16S rRNA處於緊密狀態,與30S核糖體亞基的結構相似.已發現16S rRNA中的一些序列與蛋白質合成時30S核糖體亞基、mRNA及一些翻譯因子的結合有關.核糖體16S rRNA的3'端能識別待翻譯mRNA的5'端的夏因-達爾加諾序列,起始翻譯.另有研究表明,16S rRNA也能與進入核糖體P位點的tRNA相互作用.
16S rRNA作為研究分類學和系統進化的分子受到很大重視,16S rRNA序列分析是當前對細菌進行分類學研究中較精確的一種技術.隨著分子生物學的快速發展以及該技術在醫學微生物研究中的應用,對16S rRNA作為微生物分類依據的研究也逐漸發展起來並已得到廣泛認同.
位於原核生物70S核糖體A位點的16S rRNA部分的是氨基糖苷類抗生素的作用靶位,該類抗生素通過與16S rRNA的A位點結合而阻礙原核翻譯.但由質粒介導的16S rRNA甲基化酶能將16S rRNA甲基化,從而導致細菌產生對該類抗生素較高的抗葯性.

㈤ 我有一個細菌測序結果可是不會比對,有哪位前輩可以指教一下

網頁上輸入NCBI BLAST進入主頁後黏貼你的序列,選擇blastn表示核酸比對,blastx表示氨基酸比對,確定就有比對結果了

㈥ 基因測序結果怎麼看

問題一:測序結果怎麼分析 測序結果的分析
測序都是從5端進行的,正向和反向測序是指對DNA的兩條互補鏈分別測序,通常兩個方向測序結果經校讀後完全一致才能認為得到可靠結果。生工測序結果一般都提供兩個文檔,一個是TEXT的序列文檔,一個是用Chromas軟體打開的ABI文檔。

1.尋找引物

blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi 比對,去除引物序列,找到目的片段。
在DNAMan上進行比對,看引物能不能比對上(一個不變,一個反向互補),如果比不上,那可能就不是你要的序列,如果能比上,上游以引物第一個為分界線,去除前面的;下有一最後一個為分界線,去除後面的,剩下的就是目的序列。然後在NCBI上Blast.就OK了。

批註:PCR產物進行測序的結果可能不包含引物序列

2.將找到的對應目的片段轉成*.txt格式

3.下載BioEdit軟體

第一:打開Bioedit軟體,導入拼接好的樣品序列與標准亞型參考序列
File New Alignment Sequence New Sequence 導入拼接好的樣品序列和標准參考序列(從TEXT文檔利用復制粘貼工具) Apply and close 保存結果 關閉窗口

第二:點擊菜單欄上按鈕 Accessory Application ,選擇 Clustalw Multiple Alignment

File Open Accessory Application Clustalw Multiple Alignment

第三:比對結束後,刪除比對序列兩端的多餘序列,使所有序列等長

選擇需要編輯的序列 Sequence Edit Sequence 進行序列的編輯 保存修改後結果

第四:選擇 Sequence 菜單下的 Gaps ,點擊 Lock Gaps

第五:將比對後的序列保存為Fasta 格式文檔

4.下載MAGE4.0軟體

1) 打開MEGA軟體,選擇 File 菜單欄中的 Convert To MEGA Format ,把序列文件的格式轉換為meg文檔保存;
2) 雙擊序列的meg文檔,選擇 Nucleotide Sequences ,點擊 OK ;
3) 程序運行中詢問是否為蛋白編碼序列,選擇 NO ;
4) 在MEGA操作界面選擇 Phylogeny 菜單欄下 Bootstrap Test of Phylogeny 中的 Neibour-Joining ;
5) 選擇 Test of Phylogeny 欄中的 Bootsrap , Replications 設定為1 000;在 Options Summary 欄中的 Model 項中,設定參數為 Kimura 2-Paramete r,最後選擇 pute ;
6) 將分析結果採用Los Alamos HIV序列庫提供的HIV-BLAST和Subtyping工具進行驗證。...>>

問題二:dna測序結果分析怎麼看進化圖 如果是用Sanger測序的話,電泳得到的條帶是模板連的互補鏈,電泳的方向是有3『段到5』段的,那麼從下往上讀,就可以的出互補鏈,根據反向平行,就可以推倒出模板連的鹼基序列。

問題三:怎樣分析基因測序結果 1.假設你測的是一個基因的序列,如果已知這個基因的序列,則將你測序得到的基因序列與已知的序列相比對,分析看兩者在哪個地方不對應,不對應的地方即為突變的地方.比對的軟體有sequencher,或者去NCBI網站點擊BLAST進行.
2.如果你測的是一個以前未知的序列,那麼要測幾個不同的單克隆,將測得的結果進行比對,分析一致的地方以及不一致的地方.

問題四:細菌基因組重測序結果分析報告怎麼看 測序只是最基礎的,接下來你要做功能基因分析,查找確定哪一些是編碼基因的序列,然後做表達檢測。。 如果你事先知道自己的目的基因序列,測序結束後,應該可以直接找到。

問題五:高通量基因測序檢驗報告單怎麼看 哪個公司出的,可撥打他們的客服電話。從業人員素質普遍較高,可以很詳細解答您的疑問。

問題六:如何看測序的結果與預期相差很大 先注意染色體與基因的關系,一條染色體有多個基因。
所以基因結構變異(鹼基對增、減、變)導致一個基因變。染色體結構變異,導致多個基因的重復,缺失,排列順序的改變等。所以基因突變是某一性狀改變,而染色體變異是某一系列性狀的改變。

㈦ 第二代高通量測序都有哪些平台

Illumina公司的Solexa測序平台,目前主流的型號的HiSeq-2500,以及Hiseq-2000,數據通量在每張Flow cell 300G數據,每次最多可以上2張Flow cell,單張Flow cell運行時間大約在11天左右。讀長通常是100BP,據說近期有了長度上的突破。還有一個型號是MiSeq,該機器運行通量較小,但是讀長大約在150BP以上,常用於微生物檢測,而且該型號獲得FDA認證,可以進行臨床樣本的檢測。Solexa的錯誤類型主要是顛換。
羅氏454平台,主要特點是測序長度很長,目前大於1K的測序沒有什麼難度了,比較適合基因組測序,用於搭建基因組框架,也常用於微生物基因組測序。該平台主要的錯誤類型是插入缺失。
ABI的SoLID平台,聽說該平台不在維護了,故而不再描述。
Life的Ion torrent平台,目前主要有2種型號,較早的一個型號是PGM,該測序儀原理類似於454測序,與454不同的是,454是化學反應發光進行檢測,而PGM是半導體測序,檢測H離子,如果發生了鹼基互補配對,那麼高能磷酸鍵就會釋放H離子,導致電位變化,從而根據已知加入的鹼基,就可以判斷待測序列是否與已知加入的鹼基發生互補,從而達到測序目的,測序長度可以達到400BP,主要用於微生物的檢測,錯誤類型也是插入缺失錯誤。最新的型號是IonProton,該機器與PGM測序原理一致,但是測序通量由PGM的1G數據上升至10G數據,測序精度也較PGM有大幅度提升,測序時間大約是1天。
PacBio的單分子三代測序,該測序儀最大的特點就是測序長度比454更長,更加有利於基因組的拼接工作,有些較小的微生物可以直接將基因組測通成環狀。

㈧ 基因測序結果的圖怎麼看

你是Sanger測序還是二代測序?Sanger測序的話一般公司都會給你兩個文件,一個是峰圖的文件,還有個能用文本文檔打開的文件,里邊是測序得到的序列,峰圖可以用軟體打開,比如Chromas Lite是一個免費軟體,網上就能下到。若是二代測序的話就需要生物信息學的人給處理下才能看了
1. 假設你測的是一個基因的序列,如果已知這個基因的序列,則將你測序得到的基因序列與已知的序列相比對,分析看兩者在哪個地方不對應,不對應的地方即為突變的地方。比對的軟體有sequencher,或者去NCBI網站點擊BLAST進行。
2. 如果你測的是一個以前未知的序列,那麼要測幾個不同的單克隆,將測得的結果進行比對,分析一致的地方以及不一致的地方。

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