科室微生物檢查大於多少有問題

① 微生物限度檢查對實驗室有什麼級別要求嗎

微生物限度檢查實驗室用途用於檢查非規定滅菌制劑及其原料、輔料受微生物污染的程度。

② 檢驗科的微生物檢查

1. 普通細菌培養+葯敏
2. 真菌培養+葯敏
3. 厭氧菌培養+葯敏
4. 結核桿菌培養
5. L型細菌培養+葯敏
6. 淋球菌培養+葯敏
7. 支原體培養+葯敏
8. O2培養（霍亂弧菌培養）
9. 衣原體抗原檢查
10. 輪狀病毒抗原檢查
11. 鉤端螺旋體抗體檢查
12. 肺炎支原體抗體測定
13. 幽門螺桿菌檢查：C14－呼氣試驗

③ 微生物的限度檢查項目有哪些

微生物限度檢查法系檢查非規定滅菌制劑及其原料、輔料受微生物污染程度的方法。檢查項目包括細菌數、黴菌數、酵母菌數及控制菌檢查。
微生物檢測項目有：菌落總數、大腸菌群、沙門氏菌、志賀氏菌 、金黃色葡萄菌、溶血性鏈球菌、黴菌和酵母等

④ 微生物限度

1、一般情況下，固體溶於液體的時候是不佔多少體積的，所以在一般實驗的時候是不考慮這方面問題，也就是按你說的稀釋10倍就取1g溶解稀釋，如果是片劑的話，就先看說明，對要葯物量上會有注釋，每片或每100g葯物某種成分的含量值，根據所需要的成分來計算片劑重量。例如：某維生素c每片（0.2g）含vc1000mg，想稀釋vc為10mg/ml共10ml，就取0.02g片劑溶於10ml稀釋液中就得到了（不懂的話在聯系）
2、關於微生物限度計算操作參考下
http://wenku..com/view/627047ea19e8b8f67c1cb9fd.html
原則是在做菌落計數的時候，必須平行做兩塊平板，並且要做到足夠的稀釋倍數。

問題一：每毫升約有10000；問題二：每毫升約1500以上；問題三：每毫升約5000
至於如何計算，多了解下操作步驟就能一步步了解

⑤ 微生物限度檢查主要有哪些

不知道你要查的是什麼產品？要檢查的微生物種類和限度也不同。
通常查以下幾項：
細菌總數；大腸菌群；致病菌（一般包括沙門氏菌、志賀氏菌、金黃色葡萄球菌、溶血性鏈球菌等）；
依食品類別不同，規定要檢驗的致病菌的具體種類有不同。有些還規定要檢查酵母菌和黴菌。

⑥ 在微生物限度檢查中有哪些原因會引起偏差的

1.1 無菌觀念淡薄

一些操作者認為，微生物限度范圍定得寬，多幾個、少幾個菌對結果影響不大，因此操作馬虎、隨意，這樣容易造成供試品的再次污染以及已污染菌的繁殖及死亡，從而不能真實的反映供試品的染菌情況。因此每一個檢驗者應明確的了解，在檢驗過程中的每一個環節，每個空間，每個操作，每個工具及材料，沒滅菌者都是帶菌者，都會對檢驗結果產生不確定影響，因而應牢固的建立無菌觀念。

1.2 操作技能中誤差 一些操作者在操作不熟練，及實驗條件控制不嚴格，細節不夠注意，每次操作前的消毒處理必須徹底，不得留有死角，對實驗所用器具根據材料的性質進行相應的滅菌;開啟供試品包裝的工具，如剪刀、砂輪等也應消毒，實驗用的器具如吸管應清洗干凈，滅菌，放液時不得接觸液面，每ml樣品必須放盡，否則影響細菌記數的准確性;

2 操作環境不符合要求帶來的誤差
按無菌要求，無菌室應由無菌操作間和兩個緩沖間組成，操作間與緩沖間之間應有樣品傳遞箱，操作間和緩沖間的門不應直對;操作間內不應安裝下水道，無菌室的照明燈應嵌裝在天花板內，室內六壁應光滑平整，能耐受清洗消毒;無菌室的溫濕度和潔凈級別應准確無誤，並有相應的檢測設備，由於條件限制，一些單位的無菌室在設計上不符合要求，缺少傳遞箱或緩沖設備不健全，在操作中傳遞物品不方便，人員的頻繁走動增加了染菌機會。
無菌操作台或凈化工作台要定期檢測其潔凈度，確保達到100級。潔凈級別及檢查方法通常採用塵粒數及浮游菌數或沉降菌數測定法，凈化工作台中的高效及中效過濾器應根據檢測情況，必要時及時換處理。這項工作在各單位檢驗工作中應得到足夠重視，確保操作台達到規定的技術指標。

⑦ 請教：關於USP微生物限度檢查的問題

其實，注意一下在USP31中有2個61和一個62，其中一個61較為全面，包括了控制菌內容。這樣的話，我認為全面的61其實就是31版，而另外一個61和62為修訂版，也就是32版，因為在32版中我們知道葯典將31版的61拆分為61和62兩章，所以可以按照新版執行
應該沒問題
，也就是按照62來檢驗

⑧ 微生物限度檢查法的檢驗量

檢驗量即一次試驗所用的供試品量（g、ml 或c㎡）。
除另有規定外，一般供試品的檢驗量為10g 或10ml；膜劑為100c㎡；貴重葯品、微量包裝葯品的檢驗量可以酌減。要求檢查沙門菌的供試品，其檢驗量應增加20g 或20ml（其中10g或者10ml 用於陽性對照試驗）。
檢驗時，應從2 個以上最小包裝單位中抽取供試品，大蜜丸還不得少於4丸，膜劑還不得少於4 片。
一般應隨機抽取不少於檢驗用量（兩個以上最小包裝單位）的3 倍量供試品。 供試液的制備根據供試品的理化特性與生物學特性，採取適宜的方法制備供試液。供試液制備若需加溫時，應均勻加熱，且溫度不應超過45℃。供試液從制備至加入檢驗用培養基，不得超過1 小時。
除另有規定外，常用的供試液制備方法如下。 取供試品10g，加pH7.0 無菌氯化鈉-蛋白腖緩沖液至100ml，用勻漿儀或其他適宜的方法，混勻，作為1∶10 的供試液。必要時加適量的無菌聚山梨酯80，並置水浴中適當加溫使供試品分散均勻。
3.需用特殊供試液制備方法的供試品
(1)非水溶性供試品
方法1 取供試品5g（或5ml），加至含溶化的（溫度不超過45℃）5g 司盤80、3g 單硬脂酸甘油酯、10g 聚山梨酯80 無菌混合物的燒杯中，用無菌玻棒攪拌成團後，慢慢加入45℃的pH7.0 無菌氯化鈉-蛋白腖緩沖液至100ml，邊加邊攪拌，使供試品充分乳化，作為1∶20 的供試液。
方法2 取供試品10g，加至含20ml 無菌十四烷酸異丙酯和無菌玻璃珠的適宜容器中，必要時可增加十四烷酸異丙酯的用量，充分振搖，使供試品溶解。然後加入45℃的pH7.0無菌氯化鈉-蛋白腖緩沖液100ml，振搖5～10 分鍾，萃取，靜置使油水明顯分層，取其水層作為1∶10 的供試液。
(2)膜劑供試品
取供試品100c㎡，剪碎，加100ml 的pH7.0 無菌氯化鈉-蛋白腖緩沖液（必要時可增加稀釋液），浸泡，振搖，作為1∶10 的供試液。
(3)腸溶及結腸溶制劑供試品
取供試品10g，加pH6.8 無菌磷酸鹽緩沖液（用於腸溶制劑）或pH7.6 無菌磷酸鹽緩沖液（用於結腸溶制劑）至100ml，置45℃水浴中，振搖，使溶解，作為1∶10 的供試液。
(4)氣霧劑、噴霧劑供試品
取規定量供試品，置冰凍室冷凍約1 小時，取出，迅速消毒供試品開啟部位，用無菌鋼錐在該部位鑽一小孔，放至室溫，並輕輕轉動容器，使拋射劑緩緩全部釋出。用無菌注射器吸出全部葯液，加至適量的pH7.0 無菌氯化鈉-蛋白腖緩沖液（若含非水溶性成分，加適量的無菌聚山梨酯80）中，混勻，取相當於10g或10ml 的供試品，再稀釋成1∶10 的供試液。
(5)貼膏劑供試品
取規定量供試品，去掉貼膏劑的保護層，放置在無菌玻璃或塑料片上，粘貼面朝上。用適宜的無菌多孔材料（如無菌紗布）覆蓋貼劑的粘貼面以避免貼劑粘貼在一起。然後將其置於適宜體積並含有表面活性劑（如聚山梨酯80 或卵磷脂）的稀釋劑中，用力振盪至少30 分鍾，製成供試液。貼膏劑也可以其他適宜的方法制備成供試液。
(6)具抑菌活性的供試品
當供試品有抑菌活性時，採用下列方法進行處理，以消除供試液的抑菌活性後，再依法檢查。常用的方法如下。
①培養基稀釋法 取規定量的供試液，至較大量的培養基中，使單位體積內的供試品含量減少，至不含抑菌作用。測定細菌、黴菌及酵母菌的菌數時，取同稀釋級的供試液2ml，每1ml 供試液可等量分注多個平皿，傾注瓊脂培養基，混勻，凝固，培養，計數。每1ml 供試液所注的平皿中生長的菌數之和即為1ml的菌落數，計算每1ml 供試液的平均菌落數，按平皿法計數規則報告菌數；控制菌檢查時，可加大增菌培養基的用量。
② 離心沉澱法 取一定量的供試液， 500 轉/分離心3 分鍾，取全部上清液混合，用於細菌檢查。
③薄膜過濾法 見細菌、黴菌及酵母菌計數項下的「薄膜過濾法」。
④中和法 凡含汞、砷或防腐劑等具有抑菌作用的供試品，可用適宜的中和劑或滅活劑消除其抑菌成分。中和劑或滅活劑可加在所用的稀釋液或培養基中。

⑨ 微生物達到多少 才開始會有顯著作用

在特定的條件下,微生物細胞才會產生大量的活性酶,即微生物酶.在生成過程中,控制環境條件是很重要的,以使決大部分活性酶能完整保存下來.當微生物細胞生成活性酶後,它們會鈍化,並和酶一起保留下來,以不同的方式,分幾個階段使酶凈化.目前,還沒有科學的名稱來對用於製造酶的微生物體命名.但那些含酶物質中酶活性是能夠保證的.為了最佳利用酶的催化功能,我們必須熟悉一些影響酶活性和穩定性的基本原則.因為酶是一種生物化合物,且由大量蛋白質組成,所以要受到外界環境的影響.以下原則對用於化學方面的大多數生物酶來說,都是適合的.環境的 PH 值對酶的活性和穩定性有顯著的影響.最佳活性會因不同酶的 PH 值的變化而變化.在 PH 值變化時,不同酶的活性有差異.另一個主要因素是溫度.因為酶是生物催化劑,至少部分地由蛋白質組成的,所以它們對溫度的變化十分敏感.環境溫度升高會使酶的活性成倍增強.當達到最佳溫度時,溫度在高就會引起酶的迅速退化,活性也就會降低.然而,不同種類的酶對溫度的抵抗力和敏感程度有很大的差異.例如：從枯草菌素中提取的細菌酶對熱的敏感度就比從米穀蛋白中提取的真菌酶低.一些由某類細菌發酵而來的澱粉酶甚至能在沸水中短暫保持穩定性,並在 70-80 攝氏度之間達到最佳活性.我們的實驗室已經發現大約 85% 從地衣類物質和澱粉酶中提取的酶能在高溫中保持活性,但米穀蛋白酶在此高溫中就要失去大於 90% 的活性.當經發酵的、含酶的微生物體保持乾燥時,這種物質就比濕的更能抵禦外界環境溫度的變化.事實上,大多數酶在標准狀況下不大會出現穩定性問題.採用生物酶技術處理有機廢物時,如何利用酶特性是十分重要的,包括它們怎樣起作用,在什麼條件下起作用,以及如何保持它們的活性等等.

⑩ 實驗室微生物檢驗需要注意哪些問題

微生物檢驗無菌操作的注意事項有很多細節，日常的微生物檢驗過程中要注意無菌操作，除了要在潔凈台和操作器皿上的消毒，還需要注意人員衛生和環境的衛生。

【操作技巧】

進行培養時，動作要准確敏捷，但又不必太快，以防空氣流動，增加污染機會。不能用手觸及已消毒器皿，如已接觸，要用火焰燒灼消毒或取備品更換。為拿取方便，工作檯面上的用品要有合理的布局，原則上應是右手使用的東西放置在右側，左手用品在左側，酒精燈置於中央。工作由始至終要保持一定順序性，組織或細胞在未做處理之前，勿過早暴露在空氣中。同樣，培養液在未用前，不要過早開瓶;用過之後如不再重復使用，應立即封閉瓶口直立可增加落菌機會。吸取營養液、PBS、細胞懸液及其它各種用液時，均應分別使用吸管，不能混用，以防擴大污染或導致細胞交叉污染。工作中不能面向操作野講話或咳嗽，以免唾沫把細菌或支原體帶入工作檯面發生污染。操作前用酒精擦拭超凈檯面及雙手。手或相對較臟的物品不能經過開放的瓶口上方，瓶口最易污染，加液時如吸管尖碰到瓶口，則應將吸管丟掉。

【培養前准備】

在開始實驗前要制定好實驗計劃和操作程序。有關數據的計算要事先做好。根據實驗要求，准備各種所需器材和物品、清點無誤後將其放置操作場所(培養室、超凈台)內，然後開始消毒。這可以避免開始實驗後.囚物品不全往返拿取而增加污染機會。

【火焰消毒】

在無菌環境進行培養或做其它無菌工作時，首先要點燃酒精燈或煤氣燈。以後一切操作，如按裝吸管帽、打開或封閉瓶口等，都需在火焰近處並經過燒灼進行。但要注意：金屬器械不能在為焰中燒的時間過長，以防退火，燒過的金屬鑷要待冷卻後才能挾取組織，以免造成組織損傷。吸取過營養液後的吸管不能再用火焰燒灼，因殘留在吸管頭中營養液能燒焦形成炭膜，再用時會把有害物帶入營養液中。開啟、關閉長有細胞的培養瓶時，火焰滅菌時間要短。防止因溫度過高燒死細胞。另外膠塞過火焰時也不能時間長，以免燒焦產生有毒氣體，危害培養細胞。

【洗手和著裝】

原則上和外科手術相同。平時僅做觀察不做培養操作時，可穿裝細胞培養室內紫外線照射30min的清潔工作服。在利用超凈台工作時，因整個前臂要伸入箱內，應著長袖的清潔工作服，並於開始操作前要用75%酒精消毒手。如果實驗過程中手觸及可能污染的物品和出入培養室都要重新用消毒液洗手。進入原代培養室需徹底洗手還要戴口罩、著消毒衣帽。

【操作台消毒】

體外培養細胞缺乏抗感染能力，所以防止污染是決定培養成功或失敗的首要條件。即便使用設備完善的實驗室。若實驗者粗心大意，技術操作不規范,也會導致污染。因而.為在一切操作中為最大可能的保證無菌.每一項工作都必須做到有條不紊和完全靠。無菌培養室每天都要用0.2%的新潔爾滅拖洗地面—次(拖布要專用).紫外線照射消毒30-50min，超凈工作台檯面每次實驗前要用75%酒精擦洗。然後紫外線淌毒30min。在工作檯面消毒時切勿將培養細胞和培養用液同時照射紫外線，消毒時工作檯面上用品不要過多或重疊放置.否則會遮擋射線降低消毒效果。—些操作用具如移液器、廢液缸、污物盒、試管架等用75%酒精擦洗後置於台內同時紫外線消毒。

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