㈠ 纯化水微生物限度检查操作
纯化水微生物限度操作规程
文件编号
总
页
数
共
3
页
制订部门
实施日期
起
草
人
审
核
人
批
准
人
起草日期
审核日期
批准日期
1.
目的
本规程旨在为微生物限度检查提供一个标准化方法。
2.
适用范围
微生物限度实验室
3.
责任者
QC
主管生测员
4.
安全注意事项
严格无菌操作，防止微生物污染。
5.
规程
5.1
取样
a
．在车间、实验室所有用水点按序取样，标明日期和取样点位置，一个监测
点取水
3
次，一次
250mL
，送检验室按中国药典
2010
年版二部标准进行全检。
b
．
取样前将直接接触样品的容器用
75%
酒精棉球进行擦拭，
采用灭菌后瓶收
集样品。
c
．取样时，取样人洗手并消毒，取样前用纯化水淋洗检验用取样瓶和瓶塞
3
次。灭菌瓶至少取
200mL
用于微生物检验用水，微生物检验应在取样后的
1
小
时内进行，或将样品冷藏并在
4
小时内进行检验。
5.2
微生物限度检查
纯化水检验标准微生物限度检查采用平皿法和薄膜过滤法。
5.3
微生物培养
（
1
）
除另有规定，
本检查法中细菌培养温度为
30-35
℃，霉菌、酵母菌培养温
度为
㈡ 用显微镜观察该河流中的微生物前需要用什么吸取水样
用滴管吸取河水上表层的水样，因为上表层氧气充足，微生物多，然后滴在载玻片上，盖上盖玻片，放在显微镜下观察。
㈢ 纯化水中的微生物检测怎么做 要详细
1检测前的准备
1.1仪器：微生物限度检验仪
微生物限度培养器
1.2培养基：TGYA琼脂培养基、R2A琼脂培养基
上述培养基均须做培养基的促生长试验，TGYA琼脂培养基的促生长试验参见微生物计数操作检查法SOP07-QC-3-017，R2A琼脂培养基促生长试验中选择的菌种是铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、金黄色葡萄糖球菌，操作方法同微生物计数操作检查法SOP07-QC-3-017中培养基的促生长试验。
75%的酒精
1.3开启净化工作台，把微生物限度检验仪连接电源。
2检测
2.1薄膜过滤法
使用孔径大小不超过0.45μm的薄膜过滤器。
2.2在净化工作台下，用火焰喷枪对泵头端面和过滤片进行消毒。把微生物限度培养器固定在微生物限度检验仪上，打开微生物限度培养器盖子。
2.3取50ml的纯化水，倒入微生物限度培养器中，打开微生物限度检验仪开关，立即过滤。过滤完成后，取下过滤器，在过滤器膜的另一面中，倾注TGYA琼脂培养基，盖上盖子。
2.4取50ml的纯化水，倒入微生物限度培养器中，打开微生物限度检验仪开关，立即过滤。过滤完成后，取下过滤器，在过滤器膜的另一面中，倾注R2A琼脂培养基，盖上盖子。
2.5每个样品过滤后均做2单个培养，检测完毕，取一微生物限度培养器固定在微生物限度检验仪上，注入100ml的75%酒精过滤，关闭仪器、电源。
3培养
倾注TGYA琼脂培养基的，在30℃-35℃培养48h-72h，并计数。倾注R2A琼脂培养基的，在20℃-25℃培养5d-7d，并计数。
分别计算和报告两种培养基每1ml纯化水中的cfu值。
㈣ 水样中纯种微生物的分离过程以及试验所用培养基，营养液等
你这个问题太笼统了。
水样中的微生物包括真菌，细菌。不同的目标微生物有不同的培养方法，培养基和培养液也是要根据你目标微生物的不同进行选择。
下面列出纯种细菌筛选的一般步骤。
1.首先确定所要培养的目标微生物。
2.根据目标微生物，确定培养基。你可以参考相关文献。
3.接种，富集。将水样接种到相应的培养基中进行富集培养，富集培养需要的次数据富集所得菌而定。一般需富集至10的8次方个每毫升。
4.划平板。
5.挑取单菌落，进行纯培养。
重复4.5部即可。
㈤ 微生物 水 采样
可以用深水采样器http://www.patent-cn.com/G01N/CN2410633.shtml
还有一种是带泵的野外专用取样器http://www.goepe.com/apollo/prodetail-jessecheung-498467.html
至于保存可以用水样检测拭子，冷藏可保存12个月，室温可保存4周http://www.szfitly.com/shopdetail/proct/20100621-9131995.html
㈥ 如何检测自来水中的微生物
(1)采水样 先将自来水笼头用火焰烧3分钟灭菌,再拧开水
笼头使水流5分钟后,以无菌容器接取水样.
(2)用无菌吸管取水样1ml,注入两个无菌培养皿中,
并分别倾料15ml已溶化并冷却到45℃左右的普通琼脂培养基,
并通过平面旋摇使水样与培养基充分混匀,盖上皿盖.另取一空
的无菌培养皿,倾注入15ml普通琼脂培养基,做空白对照.分别
做好标记,置37℃培养箱中培养24h,观察是否有微生物生长.
计算菌落数,并观察菌落特征.
㈦ 自来水的微生物检测方法是什么样的
自来水的微生物检测方法是：
每周进行水样微生物检测时，先打开水龙头放水2~3分钟——出水口用75%酒精喷洒——防水5分钟以上——用灭菌容器取样（灭菌前加入0.1ml的2%的硫代硫酸钠）。
加入硫酸钠的目的是：中和水中的余氯，中和后利于细菌的生长繁殖，以便观察．
㈧ 生产用水的微生物检测标准与采水样的方法是什么
我做过用固体培养基测水样中微生物含量，菌落数要求在30～300个才可以计数。你的培养基中菌落数太少，你检查一下你的取样方法和操作步骤有没有规范，不行就减小稀释倍数试试。而且一般每一个稀释浓度下要做三组平行试验。
计算时，先计算每一稀释浓度下三组平行试验的平均数，把不同浓度下的平均数进行比较，首先选择平均菌落数在30—300之间的，当只有一个稀释度的平均菌落数符合此范围时，则以该平均菌落数乘其稀释倍数即为该水样的细菌总数。
㈨ 水样采集时的注意事项
地表水采样
01采样断面应有明显的标志物，采样人员不得擅自改动采样位置。采样时应使用GPS定位或固定标志物确定采样位置，以保证采样点位置的准确。
02水温、pH值、溶解氧、电导率、透明度、盐度等项目建议现场监测。
03对于河流断面，可以使用测距仪和测深计，测量河流的宽度和深度；对于湖库点位，可以使用测深计，测量湖库深度。然后，按照HJ/T91的要求，判断需要采集垂线数和垂线上的采样点数，分别采集水样。
04采样时，不可搅动水底的沉积物。
05如果水样中含沉降性固体(如泥沙等) ，则应分离除去。分离方法为：将所采水样摇匀后倒入筒形玻璃容器(如1~2L量筒) ，静置30分钟，将不含沉降性固体但含有悬浮性固体的水样移入盛样容器并加入保存剂。测定水温、pH值、溶解氧、电导率、总悬浮物和油类的水样除外。
06测定湖库水的化学需氧量、高锰酸盐指数、叶绿素a、总氮、总磷时，水样静置30分钟后，用吸管或虹吸方式移取水样，吸管进水尖嘴应插至水样表层50mm以下位置，再加保存剂保存。
07测定五日生化需氧量的水样，应单独采样，且使用干燥的样品瓶。采样前，不用水样对样品瓶进行冲洗。将水样采集于棕色玻璃瓶中，水样必须注满，上部不留空间。
08测定硫化物的水样，应单独采样，先加入适量乙酸锌-乙酸钠溶液，再采集水释至瓶颈时加入氢氧化钠溶液至刚有白色沉淀产生，加水样充满容器，瓶塞下不留空气。
09测定石油类的水样，应单独采样，且使用干燥的样品瓶。采样前，不用水样对样品瓶进行冲洗。采样前先破坏可能存在的油膜，在水面至300mm采集柱状水样，采集的水样全部用于测定。
10测定叶绿素a的水样，应单独采样，且使用干燥的样品瓶。采样前，不用水样对样品瓶进行冲洗。如果水样中含沉降性固体(如泥沙等) ，用铝箔避光沉降30分钟，取上层水样转移至棕色硬质玻璃瓶。
11测定重金属铜、铅、锌、镉、入海控制断面监测项目铁和锰的水样，采集的水样不进行自然沉降，在现场立即(船只采样不具备过滤条件除外) 用0.45μm的微孔滤膜过滤处理后采集。
12细菌学样品的采集要求：采集样品时，采样瓶不得用样品洗涤，采集样品于灭菌的采样瓶中。清洁水体的采样量不低于400mL，其余水体采样量不低于100mL。采集河流、湖库等地表水样品时，可握住瓶子下部直接将带塞采样瓶插入水中，约距水面l0~ 15cm处，瓶口朝水流方向，拔瓶塞，使样品灌入瓶内然后盖上瓶塞，将采样瓶从水中取出。如果没有水流，可握住瓶子水平往前推。采样量一般为采样瓶容量的80%左右。样品采集完毕后，迅速扎上无菌包装纸。采集地表水、废水样品及一定深度的样品时，也可使用灭菌过的专用采样装置采样。
13采集挥发性有机物样品时，不宜用水样进行荡洗，应使水样在样品瓶中溢流不留空间，取样时应尽量避免或减少样品在空气中暴露。所有样品均采集平行双样。
14用船只采样时，采样船应位于下游方向，逆流采样，避免搅动底部沉积物造成水样污染。采样人员应在船前部采样，尽量使采样器远离船体。
15在同一采样点上分层采样时，应自上而下进行，避免不同层次水体混扰。
16测溶解氧、五日生化需氧量和有机污染物等项目时，水样必须注满容器，避免水样曝气或有气泡存在于瓶中。
17测定油类、五日生化需氧量、溶解氧、硫化物、余氯、粪大肠菌群、悬浮物、放射性等项目要单独采样。同一采样点，优先采集细菌监测项目水样。
18现场测定湖库水体的pH值、溶解氧时，应记录测定水体的深度、测定时间、水温和天气情况等，以便解释可能出现的pH值、溶解氧异常情况。
19受潮汐影响的监测断面采集涨平潮位和退平潮位的水样。为保证采样安全，般应根据潮汐变化，选择日间涨退潮时间完成采样。涨潮水样应在断面处水面涨平时采样，退潮水样应在水面退平时采样。
20每批水样，应选择部分项目加采现场空白样，与样品一起送实验室分析。
21采样时要认真填写“水质采样记录表”，用签字笔在现场记录，字迹端正、清晰。项目完整。
22采样结束前，应核对采样计划、记录与水样，如有错误或遗漏，应立即补采或重采。
23如采样现场水体很不均匀，无法采到有代表性的样品，则应详细记录不均匀的情况和实际采样情况，供使用该数据者参考。答案来自
㈩ 测定水中微生物（包括细菌真菌等）数量的方法
器材及培养
材料和试剂
蒸馏水,自来水,取自儿童公园的湖水,牛肉膏蛋白胨琼脂培养基.
仪器或其他用具
灭菌三角烧瓶,灭菌带玻璃塞瓶,灭菌培养皿,灭菌吸管,灭菌量筒.
研究方法
采用平板菌落记数技术测定水中细菌总数.
水样的采取
自来水
先将自来水水龙头用火焰灼烧3min灭菌,再开放水龙头5min后,以灭菌三角烧瓶接取水样,以待分析.
公园的湖水
应取距水面10~15cm的深层水样,先将灭菌的带玻璃塞瓶,瓶口向下浸入水中,然后翻过来,除去玻璃
塞,水即流入瓶中,盛满后,将瓶塞盖好,再从水中取出,最好立即检查,否则需放入冰箱中保存.
细菌总数的测定
自来水
Step1用灭菌吸管吸取1mL水样,注入灭菌培养皿中.共做两个平皿.
Step2分别倾注约15mL已溶化并冷却到45e左右的肉膏蛋白胨琼脂培养基.并立即在桌上做平面
旋摇,使水样与培养基充分混匀.
Step3另取一个空的灭菌培养皿,倾注肉膏蛋白胨琼脂培养基15mL,作对照.
Step4培养基凝固后,倒置与37e温箱中,培养24h,进行菌落记数.
公园的湖水
Step1稀释水样,取三个灭菌空试管,分别加入9mL灭菌水.取1mL水样注入第一管9mL灭菌水
内,摇匀,再自第一管取1mL到下一管灭菌水内,如此稀释到第三管,稀释度分别为10-1,10-2,10-3.
Step2自最后三个稀释度的试管中各取1mL稀释水加入空的灭菌培养皿,每一稀释度共做两个培养皿.
Step3各倾注15mL已溶化并冷却到45e左右的肉膏蛋白胨琼脂培养基并立即在桌上摇匀.
Step4凝固后倒置于37e恒温恒湿培养箱中培养24h.
菌落记数方法
1)计算相同稀释度的平均菌落数.若有大片菌苔生长时,弃用;以无片菌苔生长的培养皿记数.若片状菌
苔大小不到培养皿的一半,其余一半分布均匀,将此一半计数@2.
2)选择平均菌落数在30~300之间的平板.只有一个符合此范围时,以该平均菌落数@稀释倍数.有两
个在30~300之间时,按两者菌落总数比值决定,比值小于2,取平均;比值大于2,取较小的菌落数.
3)若所有稀释度的平均菌落数均大于300,则应按稀释度最高的平均菌落数@稀释倍数.
4)若所有稀释度的平均菌落数均小于30,则按稀释度的平均数@倍数.
5)若所有稀释度的平均菌落数均不在30~300之间,则以最近30或300的平均菌落数@稀释倍数.
微生物的含量能否反应水的营养化程度？
能
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