㈠ 六年级科学实验：研究一滴水中的微生物科学实验报告
实验目的：1、认识微生物是一类个体微小、大多是单细胞的生物。 2、能借助显微镜认真细致观察并描述水滴里的微生物。
实验器材：
显微镜、载玻片、滴管、水样 。
实验步骤:
1、听老师讲解显微镜使用方法。 2、学生分组观察。
3、汇报交流：你观察到什么？是什么样子的？
实验结论： 在一滴水中，生活着许许多多个体微小、结构简单、大多是一个细胞构成的生物，这些非常小，用肉眼根本看不到，只有借助显微镜才能看到生物，叫微生物。
㈡ 求一篇微生物的纯系分离及保藏的实验报告。
实验报告你自己写下吧，我好多年没写这个了。下面是实验报告的材料，希望对你有帮助：-）！
~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~分离~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~
分离技术主要是稀释和选择培养。稀释是在液体中或在固体表面上高度稀释微生物群体，使单位体积或单位面积仅存留一个单细胞，并使此单细胞增殖为一个新的群体。最常用的为平板划线法。如果所要分离的微生物在混杂的微生物群体中数量极少或者增殖过慢而难以稀释分离时，需要结合使用选择培养法，即选用仅适合于所要分离的微生物生长繁殖的特殊培养条件来培养混杂菌体，改变群体中各类微生物的比例，以达到分离的目的。为保证分离到的微生物是纯培养，分离时必须用。
~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~保种~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~
定期移植法 将菌种接种于所要求的培养基上，在最适温度中培养，至静止期或产生成熟的孢子时，置入 5℃的冰箱(或冰库)保存。在培养和保存的过程中，由于代谢产物的累积而改变了原菌的生活条件，结果菌落群体中的个体就不断衰老和死亡，因此每5～15天或 1～4个月重新移植一次，具体间隔时间因种而异。凡能人工培养的微生物都可用此法保存。此法不需特殊设备，但烦琐，费时，而且经常移植容易引起菌种退化。
矿油封藏法
将化学纯的液体石蜡(矿油)经高压蒸气灭菌，放在40℃恒温箱中蒸发其中的水分，然后注入斜面培养物中，使液面高出斜面约 1厘米。将试管直立，放在15～20℃室温中保存。由于在斜面培养物上覆盖一层液体，既能隔绝空气，又能防止培养基因水分蒸发而干燥，可以延长菌种保藏的时间。但注入的液体必须不与培养基混溶、对菌种无毒，不易被利用和挥发。此法适用于酵母菌、芽孢杆菌；不适用于固氮菌、乳酸杆菌、明串珠菌、法门氏菌和毛霉目中的大多数属种。此法简便易行，但必须注意防火和污染。
沙土管法
将沙或土过筛、烘干、装管、灭菌、然后将菌种制成孢子悬液滴入其中混匀，放到盛氯化钙的干燥器里吸除水分，干燥后保存或用火焰封管后保存。吸附在干燥沙土上的孢子因缺水而处于休眠状态，可保存较长时期。此法适用于芽孢杆菌、梭状芽孢杆菌、放线菌、镰刀菌等。
麸皮法
将麸皮制成培养基，培养要保存的菌种，待生长良好后，置干燥器中保存。这是根据中国酿造酒、醋、酱时制麴的经验所采用的一种保藏方法，适用于谷物微生物区系中的种类。
L－干燥法
又称液体干燥法或真空干燥法，用含3％谷氨酸钠的0．1M磷酸缓冲溶液 (pH7.0)做分散媒，将待保藏的微生物制成高浓度的细胞悬液，滴入无菌安瓿瓶中，每管0.05毫升；将安瓿瓶固定在多歧管上，并以水浴保持安瓿瓶内样品温度为10℃，在 13.3～1.3帕的真空度下干燥，火焰封管保存。此法不经冻结，用真实泵迅速抽乾，可避免菌种的冻伤或死亡。广泛应用于病毒、噬菌体、细菌、酵母菌、蓝藻、原生动物等。
梭氏法
将容有 1滴细胞悬液的小管，置于盛有氢氧化钾或五氧化二磷吸水剂的大试管中，用真空泵抽至1.3帕时，将大试管密封保存。这是为减少细胞死亡率而采取的一种不经冻结、缓慢脱水的干燥保藏法，适用于多种细菌、真菌。
冷冻真空干燥法
将细胞悬液每0.1～0.2毫升注入一无菌安瓿瓶，于-40℃预冻1小时，再于-20～30℃、真空度为13.3帕的条件下脱水。在脱水过程后期，安瓿瓶外温度可逐渐升至25℃。脱水后的样品含水量应在 3％以下。最后，将安瓿瓶保持真空度 1.3帕，用火焰溶封，置10℃保存。为防止细胞在冻结和脱水过程中损伤或死亡，要用保护剂制备细胞悬液。保护剂有脱脂牛奶、血清、10％蔗糖或葡萄糖溶液等，其作用是通过氧和离子键对水和细胞所产生的亲合力来稳定细胞成分的构型。此法适用于病毒、衣原体、枝原体、细菌、放线菌、酵母菌、丝状真菌等的长期保存，是当前保藏菌种的一个重要方法。但是，盐杆菌、发光杆菌、黏杆菌、阿舒囊霉、多囊霉、担子菌中的大多数属种不适用于此法保存。
液态氮超低温冻结法
用甘油或二甲亚(DMSO)作保护剂制备细胞悬液，分装入无菌安瓿瓶，每管0.2毫升，在控制温度下降速率为1℃/分钟的条件下预冻至-40℃，然后立即放入液氮生物贮存罐中气相(-150℃)保存。恢复培养时，先直接侵入38℃水浴中解冻 5～10分钟，再种植于适宜培养基内培养。这是根据在低于-130℃时一切生化反应处于停止状态、微生物也不能进行代谢活动而设计的冻结法。为避免冻死、冻伤和细胞内形成大量冰晶，用保护剂制备悬液并控制预冻时的冷却速率和解冻时融化速率。微生物的大多数属种适于慢速冻结和快速解冻。此法适用于病毒、枝原体、各种细菌、放线菌、酵母菌、丝状真菌、蓝藻等。
㈢ 食品微生物学检验 菌落总数测定报告怎么写
食品微生物学检验 菌落总数测定
1 范围
本标准规定了食品中菌落总数（Aerobic plate count）的测定方法。
本标准适用于食品中菌落总数的测定。
2 术语和定义
2.1 菌落总数 aerobic plate count
食品检样经过处理，在一定条件下（如培养基、培养温度和培养时间等）培养后，所得每g（mL）检样中形成的微生物菌落总数。
3 设备和材料
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：
3.1 恒温培养箱：36 ℃±1 ℃，30 ℃±1 ℃。
3.2 冰箱：2 ℃～5 ℃。
3.3 恒温水浴箱：46 ℃±1 ℃。
3.4 天平：感量为0.1 g。
3.5 均质器。
3.6 振荡器。
3.7 无菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。
3.8 无菌锥形瓶：容量250 mL、500 mL。
3.9 无菌培养皿：直径90 mm。
3.10 pH 计或pH 比色管或精密pH 试纸。
3.11 放大镜或/和菌落计数器。
4 培养基和试剂
4.1 平板计数琼脂培养基：见附录A 中A.1。
4.2 磷酸盐缓冲液：见附录A 中A.2。
4.3 无菌生理盐水：见附录A 中A.3。
5 检验程序
菌落总数的检验程序见图1。
图
1 菌落总数的检验程序
6 操作步骤
6.1 样品的稀释
6.1.1 固体和半固体样品：称取25 g 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内，8000 r/min～10000 r/min 均质1 min～2 min，或放入盛有225 mL 稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min～2 min，制成1:10 的样品匀液。
6.1.2 液体样品：以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:10 的样品匀液。
6.1.3 用1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓慢注于盛有9 mL 稀释液的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成1:100 的样品匀液。
6.1.4 按6.1.3 操作程序，制备10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用1 次1 mL 无菌吸管或吸头。
6.1.5 根据对样品污染状况的估计，选择2 个～3 个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在进行10 倍递增稀释时，吸取1 mL 样品匀液于无菌平皿内，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸取1 mL 空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。
6.1.6 及时将15 mL～20 mL 冷却至46 ℃的平板计数琼脂培养基（可放置于46 ℃±1 ℃恒温水浴箱中保温）倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。
6.2 培养
6.2.1 待琼脂凝固后，将平板翻转，36 ℃±1 ℃培养48 h±2 h。水产品30 ℃±1 ℃培养72 h±3 h。
6.2.2 如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时，可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基（约4 mL），凝固后翻转平板，按6.2.1 条件进行培养。
6.3 菌落计数
可用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位（colony-forming units，CFU）表示。
6.3.1 选取菌落数在30 CFU～300 CFU 之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU 的平板记录具体菌落数，大于300 CFU 的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。
6.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘以2，代表一个平板菌落数。
6.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌
㈣ 医学微生物实验报告结果以及对实验的讨论分析
你以上的问题，我都能给你答案。你加我QQ（用户名）就是了，备注：网络。
我可以给你详细的资料和解答。其实上面的东西都是比较简单的微生物实验操作，你看到资料了就采纳我吧。先给你看一张图片
㈤ 微生物实验报告的总结怎么写
写清楚你的实验名称、实验目的、所用到的仪器试剂、实验步骤、实验结果和对整个实验的分析。
㈥ 如何写生物实验报告
把实验的目的、方法、过程、结果等记录下来，经过整理，写成的书面汇报，就叫实验报告。
实验报告的种类因科学实验的对象而异。如化学实验的报告叫化学实验报告，物理实验的报告就叫物理实验报告。随着科学事业的日益发展，实验的种类、项目等日见繁多，但其格式大同小异，比较固定。实验报告必须在科学实验的基础上进行。它主要的用途在于帮助实验者不断地积累研究资料，总结研究成果。
实验报告的书写是一项重要的基本技能训练。它不仅是对每次实验的总结，更重要的是它可以初步地培养和训练学生的逻辑归纳能力、综合分析能力和文字表达能力，是科学论文写作的基础。因此，参加实验的每位学生，均应及时认真地书写实验报告。要求内容实事求是，分析全面具体，文字简练通顺，誊写清楚整洁。
实验报告内容与格式
(一) 实验名称
要用最简练的语言反映实验的内容。如验证某程序、定律、算法，可写成“验证×××”；分析×××。
(二) 所属课程名称
(三) 学生姓名、学号、及合作者
(四) 实验日期和地点（年、月、日）
(五) 实验目的
目的要明确，在理论上验证定理、公式、算法，并使实验者获得深刻和系统的理解，在实践上，掌握使用实验设备的技能技巧和程序的调试方法。一般需说明是验证型实验还是设计型实验，是创新型实验还是综合型实验。
（六）实验原理：在此阐述实验相关的主要原理。
㈦ 普通光学显微镜的使用及微生物观察实验报告怎么写
标本制作：
制作显微镜标本，分一下6大步骤，可以供初学者进行参考：
1．取载玻片与盖玻片各一片，用软布擦干净，由于盖拨片很薄，擦时要小心，可用左手拇指和食指夹住盖玻片边缘，把纱布平铺在右手手掌上，从上下两面轻轻夹住盖玻片，平均使用力量慢慢轻擦，这样才不会把盖玻片擦碎。
2．用滴管吸取1~2滴清水，放在载玻片中央。
3．用镊子撕取观察物体一小片（无论观察细胞组织或器官，材料必须做成薄片，才能观察，这些薄片不能过厚，一般一层细胞的厚度为好，如果过厚不但细胞互相重叠，而且光线不易穿透，虽然在显微镜下能勉强看到轮廓，但细致的结构很难看清），置于载玻片上的小水滴中，尽量勿使材料皱缩。
4．用镊子夹取一片干净的盖玻片，先以盖玻片的一边斜着与小水滴接触，然后便慢慢放下盖玻片，将观察材料全部盖上，操作时，防止盖玻片骤然下降，以免发生气泡，妨碍观察效果。
5．制作好的玻片，要求盖玻片与载玻片之间恰好被水分充满；当水分不足时，可用滴管从盖玻片一侧的边缘滴少许水分，在另一侧用吸水纸吸，从而使盖玻片与载玻片之间被水分充满；当水分多余时，可用吸水纸吸去多余水分。
6、染色：用滴管从盖玻片一侧的边缘滴少许碘液，在另一侧用吸水纸吸，从而使盖玻片与载玻片之间被碘液充满；当碘液多余时，可用吸水纸吸去多余碘液。 制作好后就可以放到显微镜下面观察了。
