腔镜消毒中生物检测是什么

⑴ 生物检测技术是什么

是利用生物体（整体组织 ，离体组织微生物和细胞等）来测定药物的生物活性的一种方法。它以药物的药理为基础，以生物统计为工具，运用特定的实验设计，在一定条件下比较供试品和相当的标准品或对照品所产生的特定反应，通过等反应剂量间比例的运算，从而测得供试品的效价。

⑵ 消毒内镜清洗用水微生物学监测要求是

消毒内镜应每季度进行微生物学监测，监测采用轮换抽检的方式。每次按25％的比例抽检，内镜少于等于5条的，应每次全部监测，多于5条的，每次监测数量应不少于5条。

检测方法：取清洗消毒后内镜，采用无菌注射器抽取50ml含相应中和剂的洗脱液，从活检口注入冲洗内镜管路并全量收集送检。实验室检测建议采用滤膜过滤法，合格标准菌落总数≤20CFU／件。

(2)腔镜消毒中生物检测是什么扩展阅读：

生物监测方法的建立是以环境生物学理论为基础的。根据监测生物系统的结构水平、监测指示及分析技术等，可以将生物监测的基本方法大致分为四大类，即生态学方法、生理学方法、毒理学方法及生物化学成分分析法。

生物监测是环境监测的重要手段之一。利用一些对环境污染物敏感的植物，可以快速、廉价地了解环境污染状况。具有较高的实用价值。早期生物监测方法主要通过观察生物群落的数量、形态变化和习性进行定性分析。

如利用细菌总数和粪便污染指标细菌监测水质。艾姆斯试验用于检测物质的致突变性和致癌性。水质监测或霉菌检测物质，通过确定藻类在水中的数量。

监测技术的不断发展和相互支持的学科，环境监测生物监测技术得到了迅猛发展，派生的一系列高效和准确的监测技术，如基因工程、电泳分离和净化技术、PCR技术和DNA探针技术，酶蛋白标记、免疫检测技术，生物传感器、生物毒性试验、单细胞电泳技术等。

⑶ 生物安全防控监测仪监测呈阳性是指什么

生物监测是消毒供应中心用来检测灭菌设备、实现批次放行的重要监测手段，而生物监测一旦出现了假阳性，会带来很多不必要的额外工作，造成财力、物力及人力的浪费。常见的生物监测指示物为48小时压力蒸汽灭菌生物指示物与3小时压力蒸汽灭菌生物指示物两种。
48小时压力蒸汽灭菌生物指示物是利用了嗜热脂肪杆菌是产酸菌的特性来监测灭菌成败的。 这种生物指示物里面加人了酸碱指示剂，如果没有细菌繁殖，培养液保持中性呈紫色；如果灭菌失败，嗜热脂肪杆菌繁殖使培养液变酸，就会变成黄色。
对于48小时压力蒸汽灭菌生物指示物，避免假阳性的措施首先是防止杂菌（主要指的是其他“产酸菌”）的污染。小心压破安瓿瓶，避免外面的塑料管破损而使得外界杂菌有了可乘之机；不要使用水浴的方式做培养，因为水浴锅里面通常会滋生杂菌。
其次要避免酸性物质直接污染生物指示物培养液。3小时压力蒸汽灭菌生物指示物是利用了嗜热脂肪杆菌代谢过程中会产生a-葡萄糖苷酶的特性来监测灭菌成败的。a-葡萄糖苷酶天然能够水解a-葡萄糖苷结构，因此培养液里面加人了一种特殊的荧光物质，这种荧光物质平时由于受到a-葡萄糖苷的保护，并不会发出荧光，只有等到被a-葡萄糖苷酶切开之后才暴露荣光基团，报告阳性。
对于3小时压力蒸汽灭菌生物指示物，避免假阳性的措施有：首先，培养皿不要放在太阳直射或者其他强光环境下，以避免天然或者人造光的干扰；其次，不要在生物指示物上面写字或者做记号，尤其是马克笔，油墨本身就有荧光，容易造成假阳性；第三，注意对培养阅读孔的清洁。
外界污染物，尤其是生物指示物培养液漏液结晶会带有荧光，可能对后续多次培养阅读造成干扰,形成假阳性。

⑷ 内镜消毒效果监测采样方法有哪些

4.1消毒内镜采样
4.1.1采样方法：
4.1.1.1监测采样部位为内镜的内腔面。
4.1.1.2 用无菌注射器抽取10ml含相应中和剂的缓冲液，从待检内镜活检口注入，用15ml无菌试管从活检出口收集。及时送检。
4.1.2 菌落计数：将送检液用漩涡器充分振荡，取0.5ml，加入2只直径90mm无菌平皿，每个平皿分别加入已经熔化的45℃-48℃营养琼脂15ml-18ml，边倾注边摇匀，待琼脂凝固，于35℃培养48小时后计数。
4.1.3 计算：两平皿平均菌落数×20
4.2灭菌内镜及附件
4.2.1腹腔镜、宫腔镜、膀胱镜、关节镜、脑室镜等。
4.2.2 内镜附件：活检钳、细胞刷、切开刀、导丝、碎石器、网篮、造影导管、异物钳等。
4.2.3采样地点：生物安全柜、手术室、无菌室等。
4.2.4采样方法：用无菌棉拭子涂抹后，剪去手接触部分，放入10ml采样液的试管中。及时送检，2小时内检测
4.3致病菌检测：将送检液用漩涡器充分震荡，取0.2ml分别接种90mm血平皿、中国兰血平皿和SS平皿，均匀涂布，35℃培养48小时，观察有无病菌生长。
4.4增菌：SCDLP（金葡、铜绿假单胞）、 葡萄糖肉汤（乙型溶血性链球菌）、SF（亚硒酸盐增菌液）、GN（志贺氏增菌液）、乳糖胆盐发酵管。
4.5致病菌：金黄色葡萄球菌、溶血性链球菌、大肠杆菌、沙门氏菌、志贺氏菌。
5. 结果判定
5.1消毒后的内镜合格标准为：细菌总数<20cfu/件，不能检出致病菌；
5.2灭菌后内镜合格标准为：无菌检测合格。
5.3 内镜结构复杂,关节多、孔道细长 (2--6英尺，直径 几毫米)，
5.4.使用时, 易沾挂血液、黏液、组织、排泄物等。
5.5.胃镜在应用后，可有105-1010cfu/mL的生物负载。
5.6.支气管镜在清洗前, 平均负载为6.4×104cfu/mL。

⑸ 医院消毒中心供应室必须有哪些监测

这个问题被浏览这么多次了，我也回答一下，作为讨论。
其实你所说的“哪些监测”，应为：物理监测、化学监测和生物监测。
1、物理监测一般设备本身有打印功能，可以把清洗机或灭菌器等的物理数据全部记录；
2、化学监测就是对于包内、包外使用的化学指示卡和化学指示胶带；
3、生物监测是指按照消毒技术规范和行业规范对于各种灭菌方式的生物指示剂的使用。

⑹ 请问医院消毒供应室的工艺监测是什么

医院消毒是预防医院内感染的重要措施之一，消毒效果的监测是评价其消毒方法是否合理、消毒效果是否可靠的手段，因而在医院消毒工作中至关重要。
医院消毒效果监测时需遵循以下原则：监测人员需经过专业培训，掌握一定的消毒知识，具备熟练的检验技能；选择合理的采样时间(消毒后、使用前)；遵循严格的无菌操作。
20.2 热力灭菌效果的监测方法
20.2.1 压力蒸汽灭菌效果监测方法
20.2.1 化学监测法
(1)化学指示卡(管)监测方法：将既能指示温度，又能指示温度持续时间的化学指示管(卡)放人每一待灭菌的物品包中央，经一个灭菌周期后，取出指示管(卡)，根据其颜色及性状的改变判断是否达到灭菌条件。
(2)化学指示胶带监测法：将化学指示胶带粘贴于每一待灭菌物品包外，经一个灭菌周期后，观察其颜色的改变，以指示是否经过灭菌处理。
(3)结果判定：检测时，所放置的指示管(卡)的性状或颜色均变至规定的条件，可认为该包灭菌合格。
(4)注意事项：监测所用化学指示剂须经卫生部批准，并在有效期内使用。
20.2.1.2 生物监测法
(1)指示菌株：指示菌株为嗜热脂肪杆菌芽胞(ATCC7953或SSIK31株)，菌片含菌量为5.0X105-5.0x106cfu/片，在121℃±0.5℃条件下，D值为13-1.9min，杀灭时间(KT值)≤19min，存活时间(ST值)为≥3.9min。
(2)培养基：试验用培养基为溴甲酚紫蛋白胨水培养基。
(3)检测方法：将两个嗜热脂肪杆菌芽胞菌片分别装人灭菌小纸袋内，置于标准试验包中心部位。
灭菌柜室内,排气口上方放置一个标准试验包(由3件平纹长袖手术衣，4块小手术巾，2块中手术巾，1块大手术中，3O块10cm x 10cm8层纱布敷料包裹成25cm X 30cm x 30cm大小)。手提压力蒸汽灭菌器用通气贮物盒(22cm x 13cm x 6cm)代替标准试验包，盒内盛满中试管，指示菌片放于中心部位的两只灭菌试管内(试管口用灭菌牛皮纸包封)，将贮物盒平放于手提压力蒸汽灭菌器底部。
经一个灭菌周期后，在无菌条件下，取出标准试验包或通气贮物盒中的指示菌片，投人溴甲酚紫蛋白胨水培养基中，经56℃培养7天(自含式生物指示物按说明书执行)，观察培养基颜色变化。检测时设阴性对照和阳性对照。
(4)结果判定：每个指示菌片接种的溴甲酚紫蛋白胨水培养基都不变色，判定为灭菌合格；指示菌片之一接种的溴甲酚紫蛋白胨水培养基，由紫色变为黄色时，则灭菌不合格。
(5)注意事项：监测所用菌片须经卫生部认可，并在有效期内使用。
20 .2.2 干热灭菌效果监测方法
20.2.2.1 化学检测法
(1)检测方法：将既能指示温度又能指示该温度持续时间的化学指示剂分别放人待灭菌的物品中。经一个灭菌周期后，取出化学指示剂，据其颜色及性状的改变判断是否达到灭菌条件。
(2)结果判定：检测时，所放置的指示管的颜色及性状均变至现定的条件，则可认为该包达到灭菌条件。
(3)注意事项：检测所用的化学指示剂需经卫生部认可，并在有效期内使用。
20.2.2.2 物理检测法：(热电偶检测法)
(l)检测方法：检测时，将多点温度检测仪的多个探头分别放于灭菌器各层内、中、外各点。关好柜门；将导线引出，由记录仪中观察温度上升与持续时间。
(2)结果判定：若所示温度(曲线)达到预定温度，则灭菌温度合格。
20.2.2.3 生物检测法：
(1)指示菌株：枯草杆菌黑色变种芽胞(ATCC9372)，菌片含菌量为5.0XI05一5.0XI06cfu/片。其抗力应符合以下条件：在温度160±2℃时，其D值为1.3-1.9min，存活时间≥3.9min，死亡时间 ≤1.9min。
(2)检测方法：将枯草杆菌芽胞菌片分别装人灭菌中试管内(1片/管)。灭菌器与每层门把手对角线内，外角处放置2个含菌片的试管，试管帽置于试管旁，关好柜门，经一个灭菌周期后，待温度降至80℃时，加盖试管帽后取出试管。在无菌条件下，加人普通营养肉汤培养基(5ml/管)，以37℃培养48h，观察初步结果，无菌生长管继续培养至第七日。
(3)结果判定：若每个指示菌片接种的肉汤管均澄清，判为灭菌合格，若指示菌片之一接种的肉汤管混浊，判为不合格，对难以判定的肉汤管，取0.1ml接种于营养琼脂平板，用灭菌L棒涂匀，放37℃培养48h，观察菌落形态，并做涂片染色镜检，判断是否有指示菌生长；若有指示菌生长，判为灭菌不合格；若无指示菌生长，判为灭菌合格。
(4)注意事项：检测所用的指示菌片需经卫生部认可，并在有效期内使用。
20.3 紫外线消毒效果的监测
20.3.1 紫外线灯管辐照度值的测定
1)检测方法：开启紫外线灯5min后，将测定波长为254nm的紫外线辐照计探头置于被检紫外线灯下垂直距离1m的中央处，待仪表稳定后，所示数据即为该紫外线灯管的辐照度值。
(2)结果判定：普通30w。直管型紫外线灯，新灯辐照强度≥90Uw/cm2为合格；使用中紫外线灯辐照强度≥70Uw/cm2对为合格；30W高强度紫外线新灯的辐照强度≥180 Uw/cm2行为合格。
(3)注意事项：测定时电压220v土5v，温度20一25℃，相对湿度<60%，紫外线辐照计必须在计量部门检定的有效期内使用。
20.3.2 生物监测法
(1)空气消毒效果监测：监测按20.7执行。
①表面消毒效果监测：监测按20.6执行。
20.4 医疗器械灭菌效果的监测
20.4.1 采样时间：在灭菌处理后，存放有效期内采样。
20.4.2 常规监测
(1)检测方法：用无菌的方法将拟检缝合针、针头、手术刀片等小件医疗器械各5支，分别投人5ml的无茵洗脱液中；注射器则取5副在5ml无菌肉汤中分别抽吸5次；手术钳、镊子等大的医疗器械在无菌操作下取2份以上用沾有无菌洗脱液的棉拭子反复涂擦采样，并将棉拭子投入5ml无菌洗脱液中。将采样管用力振打80次，用无菌吸管吸取lml待检样品放于灭菌平皿内，加人已熔化的45℃-48℃的营养琼脂15-18ml，边倾注边摇匀，待琼脂凝固，置37℃温箱培养48h，计数菌落数。
(2)结果判定：平板上无菌生长为灭菌合格。
(3)注意事项：若消毒因子为化学消毒剂时，采样液中应加人相应中和剂。
20.4.3 无菌检验
20.4.3.1 无菌检验前准备

20.4.3.2 无菌操作：取缝合针、针头、刀片等小件医疗器械5件直接浸人6管需一厌氧培养管(其中一管作阳性对照)与4管霉菌培养管C培养基用量为15ml/管。
取5副注射器，在5ml洗脱液中反复抽吸5次，洗下管内细菌，混和后接种需一厌养菌培养管(共6管，其中1管作阳性对照)与霉菌培养管(共4管)。接种量：lml注射器为0.5ml，2ml注射器为Iml，5-10ml注射器为2ml，20-50ml注射器为5ml，培养基用量：接种量为2ml以下为15ml/管，接种量5ml为40ml/管。
手术钳、镊子等大件医疗器械取2件用沾有无菌洗脱液的棉拭子反复涂抹采样，将棉拭子投人sml无菌洗脱液中，将采样液混匀，接种于需一厌氧培养管(共6管，其中1管作阳性对照)与霉菌培养基(共4管)。接种量为lml/管，培养基用量为15ml/管。
20.4.3.3 培养：在待检样品的需一厌氧培养管中，接种预先准备的金黄色葡萄球菌阳性对照管液1：1000稀释1ml，将需一厌氧培养管以及阳性与阴性对照管均于30-35℃培养5天，霉菌培养管与阴性对照管于20-25℃培养7天，培养期间逐日检查是否有菌生长，如加人供试品后培养基出现混浊或沉淀，经培养后不能从外观上判断时，可取培养液转种人另一支相同的培养基中或斜面培养基上，培养48-72h后，观察是否再现混浊或在外面上有无菌落生长，并在转种的同时，取培养液少量，涂片染色，用显微镜观察是否有菌生长。
20.4.3.4 结果判定：阳性对照在24h内应有菌生长，阴性对照在培养期间应无菌生长，如需一厌氧菌及霉菌培养管内均为澄清或更显混浊但经证明并非有菌生长，判为灭菌合格；如需一厌氧菌及霉菌培养管中任何1管显混浊并证实有菌生长，应重新取样，分别同法复试2次，除阳性对照外，其他各管均不得有菌生长，否则判为灭菌不合格。
20.4.4 注意事项
(1)送检时间不得超过6h，若样品保存于0-4℃，则不超过24h。
(2)被采样本表面积<100cm2取全部表面；被采样本表面积 ≥ 100Cm2，取 100cm2。
(3)若消毒因子为儿学消毒剂，采样液中应加人相应中和剂。
20.4.5 热原检查法：
20.4.5.鲎试验

20.4.5.2 动物试验法
(1)原理：将一定剂量的供试品，在规定的时间内，观察家兔体温升高情况，以判定供试品中所含热原的限度是否符合规定。
(2)供试家兔：试验用的家兎应健康无伤；体重1.7-3.0kg，雌兔应无孕。预测体温前7日起，即应用同一饲料饲养。在此期间内，体重应不减轻，精神、食欲、排泄等不得有异常现象。未经使用于热原检查的家兔，或供试品判定为符合规定，但组内升温达06T的家兔；或供试品判定为不符合规定，但其组内家兔平均升温未达0.8℃，且已休息两周以上的家兔；或三周内未曾使用的家兔，均应在检查供试品前3-7日内预测体温，进行挑选。挑选试验的条件与检查供试品时相同；仅不注射药液，每隔lh测量体温1次，共测4次，4次体温均在38.0-39.6℃的范围内，且最高最低体温的差数不超过0.4℃的家兔，方可供热原检查用。用于热原检查后的家兔，如供试品判定为符合规定，至少休息2日方可供第2次检查用。用于热原检查后的家兔，如供试品判定为不符合规定，且其组内家兔平均升温达0.8℃或更高时，则组内全部家兔不再使用，每一家兔的使用次数，用于一般药品的检查，不应超过10次。
(3)试验前的准备：在作热原检查前l-2日，供试用家兔应尽可能处于同一温度的环境中，实验室和饲养室的温度相差不得大于5℃，实验室的温度应在17-28℃，在试验全部过程 中，应注意室温变化不得大于3℃，应避兔噪音干扰。家兔在试验前至少lh开始停止给食并置于适宜的装置中，直至试验完毕c家兔体温应使用精密度为±0.1℃的肛温计，或其他同样精确的测温装置。肛温计插人肛门的深度和时间各兔应相同，深度一般约为6cm，时间不得少于Imin，每隔30-60min测量体温1次，一般测量2次，两次体温之差不得超过0.2℃，以此两次体温的平均值作为该兔的正常体温。当日使用的家兔，正常体温应在38.0-39.6℃的范围内，且各兔间正常体温之差不得超过l℃。
(4)试验用的注射器、针头及一切和供试品溶液接触的器皿，应置烘箱中用250℃加热30min或用180℃加热2h，也可用其他适宜的方法除去热原。
(5)检查法：取适用的家兔3只，测定其正常体温后15min内，自耳静脉缓缓注人规定剂量并温热至约38℃的供试品溶液，然后每隔lh 按前法测量其体温1次，共测3次，以3次体温中最高一次减去正常体温，即为该兔体温的升高度数。如 3只家兔中有 1只体温升高 0.6℃或0.6℃以上，或 3只家兔体温升高均低于 0.6℃，但升高的总数达 l.4℃或 l.4℃以上，应另取 5只家兔复试，检查方法同上。
(6)结果判定：在初试3只家兔队体温升高均低于0.6℃，并且3只家兔体温升高总数低于1.4℃，或在复试的5只家兔中，体温升高0.6℃或0.6℃以上的兔数仅有1只，并且初试，复试合并8只家兔的体温升高总数为3.5℃或3.5℃以下，均认为供试品符合热原检查条例规定。
在初试3只家兔中，体温升高0.6℃或0.6℃以上的家兔超过1只，或在复试的5只家兔中；体温升高0.6℃或0.6℃以上的兔数超过1只，或在初试、复合并8只家兔的体温升高总数超过3.5℃，均认为供试品的热原检查不符合规定。
20.5 手和皮肤粘膜消毒效果监测
20.5.1 采样时间；在消毒后立即采样。
20.5.2 采样方法
(1)手的采样：被检人五指并拢，用浸有含相应中和剂的无菌洗脱液的棉拭子在双手指屈面从指根到指端往返涂擦2次(一只手涂擦面积约30cm2)，并随之转动采样棉拭子，剪去操作者手接触部位，将棉拭子投人10ml含相应中和剂的无菌洗脱液试管内，立即送检。
(2)皮肤粘膜采样：用 5cm × 5crn灭菌现格板，放在被检皮肤处；用没有含相应中和剂的无菌洗脱液的棉拭子1支，在规格板内横竖往返均匀涂擦各5次，并随之转动棉拭子，剪去手接触部位后，将棉拭子投人10ml含相应中和剂的无菌洗脱液的试管内，立即送检。不规则的粘膜皮肤处可用棉拭子直接涂擦采样。
20.5. 3 检测方法
(1)细菌总数检测：将采样管用力振打80次，用无菌吸管吸取1.0ml待检样品接种于灭菌平皿内加人已熔化的45-48℃的营养琼脂15-18ml，边倾注边摇匀，待琼脂凝固，置37℃温箱培养48h，计数菌落数。
采样结果计算方法：
细菌总数(cfu/cm2)=平板上菌落数×稀释倍数/采样面积(cm2)
(2)致病菌检测：致病菌检测按2015原则执行。
20.5.4 结果判定
(1)消毒洗手
l、ll类区域工作人员：细菌总数≤5Cfu/Cm2，并未检出致病菌为消毒合格。
lll类区域工作人员：细菌总数≤10 Cfu/Cm2，并未检出致病菌为消毒合格。
lV类区域工作人员：细菌总数 ≤15 Cfu/Cm2，并未检出致病菌为消毒合格。
母婴同室＼婴儿室、新生儿室及儿科病房的工作人员手上，不得检出沙门氏菌及其它致病菌。
(2)皮肤粘膜：参照手的卫生学标准执行。
20.5.5 注意事项
皮肤粘膜采样处，若表面不足 5cm × 5cm可用相应面积的规格板采样。
20.6 物品和环境表面消毒效果的监测
20.6.1 采样时间：在消毒处理后进行采样。
20.6.2 采样方法：用5cm×5cm灭菌规格板，放在被检物体表面，采样面积≥100cm2，连续采样4个，用浸有含相应中和剂的无菌洗脱液的棉拭于1支；在规格板内横竖往返均匀涂擦各5次，并随之转动棉拭子，剪去手接触部位后，将棉拭子投人10ml含相应中和剂的无菌洗脱液试管内，立即送检。
门把手等不规则物体表面用棉拭子直接涂擦采样。
20.6.3 检测方法
(1)细菌总数检测：检测方法按20.5.3(1)执行。小型物体表面的结果计算，用cfu/件表示。
(2)致病菌检测：检测方法按 20 .14执行。
20.6.4 结果判定
l、ll类区域：细菌总数≤5cfu/Cm2，并未检出致病菌为消毒合格。
Ill类区域：细菌总数≤10 cfu/Cm2，并未检出致病菌为消毒合格。
lV类区域：细菌总数≤15 cfu/Cm2，并未检出致病菌为消毒合格。
母婴同室、早产儿室、婴儿室、新生儿室及儿科病房的物体表面不得检出沙门氏菌。
20.6.5 注意事项
(1)送检时间：按20.4.4(1)执行。
(2)采样面积；按20.4.4(2)执行。
20.7 空气消毒效果的监测
20.7.1 采样时间：在消毒处理后、操作前进行采样。
20.7.2 采样方法
(1)布点方法；室内面积≤30Cm2，设内、中、外对角线3点，内、外点布点部位距墙壁IM处；室内面积>30M2，设4角及中央5点，4角的布点部位距墙壁lm处。
(2)平板暴露法：将普通营养琼脂平板(直径为9CM)放在室内各采样点处，采样高度为距地面1.5m，采样时将平板盖打开，扣放于平板旁，暴露5min，盖好立即送检。
20.7.3 检测方法：将送检的平板置37℃温箱培养48h，计数菌落数，并分离致病菌。

⑺ 有谁能跟我说一下内镜消毒液的生物学检测方法求大神指导！

清洗步骤、方法及要点包括：
一、水洗
（一）将内镜放入清洗槽内：
1、在流动水下彻底冲洗，用纱布反复擦洗镜身，同时将操作部清洗干净；
2、取下活检入口阀门、吸引器按钮和送气送水按钮，用清洁毛刷彻底刷洗活检孔道和导光软管的吸引器管道，刷洗时必须两头见刷头，并洗净刷头上的污物；
3、安装全管道灌流器、管道插塞、防水帽和吸引器，用吸引器反复抽吸活检孔道；
4、全管道灌流器接50毫升注射器，吸清水注入送气送水管道；
5、用吸引器吸干活检孔道的水分并擦干镜身。
（二）将取下的吸引器按钮、送水送气按钮和活检入口阀用清水冲洗干净并擦干。
（三）内镜附件如活检钳、细胞刷、切开刀、导丝、碎石器、网篮、造影导管、异物钳等使用后，先放入清水中，用小刷刷洗钳瓣内面和关节处，清洗后并擦干。
（四）清洗纱布应当采用一次性使用的方式，清洗刷应当一用一消毒。
二、酶洗
（一）多酶洗液的配置和浸泡时间按照产品说明书。
（二）将擦干后的内镜置于酶洗槽中，用注射器抽吸多酶洗液100毫升，冲洗送气送水管道，用吸引器将含酶洗液吸入活检孔道，操作部用多酶洗液擦拭。
（三）擦干后的附件、各类按钮和阀门用多酶洗液浸泡，附件还需在超声清洗器内清洗5～10分钟。
（四）多酶洗液应当每清洗1条内镜后更换。
三、清洗
（一）多酶洗液浸泡后的内镜，用水枪或者注射器彻底冲洗各管道，以去除管道内的多酶洗液及松脱的污物，同时冲洗内镜的外表面。
（二）用50毫升的注射器向各管道冲气，排出管道内的水分，以免稀释消毒剂。

⑻ 什么是生物相容性检测主要针对那些医疗器械呢

1.什么是生物相容性？

生物相容性指的是生命体组织对非活性材料所产生的一种性能，一般指的是材料和宿主之间的额相容性，包括了组织相容性和血液相容性等，生物相容性既不引起生物体组织、血液的不良反应。

了解完什么是生物相容性，那你就应该明白什么是生物相容性检测了，是医疗器械检测机构提供的检测服务，是对医疗医用器械产品进行生物相容检测，因为现在许多都要求生物相容性检测（尤其是近期的口罩出国）所以大家也都会搜索生物相容性检测，该词也逐步火起来。

生物相容性检测主要针对医疗器械及医用产品，主要涉及的产品要看该产品相关的检测标准，一般来说与宿主有产品基础的医用医疗器械都会要求做相应的生物相容性检测。华通威生物相容性常规三项检测‘体外细胞毒性检测’‘皮肤刺激试验’‘致敏试验’三项也是经常要做的。

⑼ 腹腔镜一定要过氧化氢消毒生物检测合格后才能发放器械吗，发放的相关规定有哪些

腹腔镜是一定要用过氧化氢消毒生物检测合格后才能发放器械的，因为腹腔镜是要深入人体的腹腔的，如果没有消毒的话很容易引起感染。

⑽ 医疗器械的无菌检查法

无菌检查是不能用固体培养基的，要用硫乙醇酸盐流体培养基和改良马丁液体培养基，最好用薄膜过滤法。
请参考国标：
GB/T14233.2-2005