5ml浮游生物计数框怎么求密度

Ⅰ 如何调查浮游生物种群密度

抽样检测法这个不记得具体的了. 标志重捕法和样方法是调查 种群密度的方法取样器取样法是用来调查土壤小动物的种类时的取样方法目测估计法和记名统计法 是调查土壤小动物的时候 具体计数的方法.一个准确一个模糊. 显微计数法 是在显微镜下观察并计算某种微生物的数量的方法. 稀释涂布平板法是用稀释后 在培养基上形成 菌落的方法来计算 细菌等微生物的数量的方法；

Ⅱ 如何调查浮游生物种群密度

对浮游生物这类原生动物和藻类计数一般采用PFU（聚氨酯塑料泡沫块）方法。制作固定大小的泡沫块在各采样位置悬挂一定时间后将样品取出现场用显微镜对活体种类进行观察鉴定和计数从而得到指定种的种群密度。

Ⅲ 为什么浮游植物原生动物可以用相同的方法测定

为什么浮游植物原生动物可以用相同的方法测定
一、采?集 采集水体中的浮游动物有两种方法：一为用采 水器采水后沉淀分离；
二、沉淀和滤缩?把水样中的浮游动物浓缩一般采用沉淀和滤缩的方法。
三、计数?进行浮游动物计数的主要仪器是显微镜和计数 框，计数原生动 物用0.1毫升

Ⅳ 发生赤潮时浮游生物的密度

发生赤潮时的浮游生物的密度一般是102—106细胞/毫升。
赤潮，又称红潮，国际上也称其为“有害藻类”或“红色幽灵”。是在特定的环境条件下，海水中某些浮游植物、原生动物或细菌爆发性增殖或高度聚集而引起水体变色的一种有害生态现象。赤潮并不一定都是红色，主要包括淡水系统中的水华，海洋中的一般赤潮，近几年新定义的褐潮（抑食金球藻类），绿潮（浒苔类）等。
“赤潮”，是海洋生态系统中的一种异常现象。它是由海藻家族中的赤潮藻在特定环境条件下爆发性地增殖造成的。海藻是一个庞大的家族，除了一些大型海藻外，很多都是非常微小的植物，有的是单细胞生物。根据引发赤潮的生物种类和数量的不同，海水有时也呈现黄、绿、褐色等不同颜色。
赤潮是伴随着浮游生物的骤然大量增殖而直接或间接发生的现象。本来是渔业方面的用语，并没有严格的定义。水面发生变色的情况甚多，厄水（海水变绿褐色）、苦潮（按即赤潮，海水变赤色）、青潮（海水变蓝色）及淡水中的水华，都是同样性质的现象。构成赤潮的浮游生物种类很多，但甲藻、硅藻类大多是优势种。当发生赤潮时的浮游生物的密度一般是102—106细胞/毫升。
形成原因
浮游生物
所谓海洋浮游生物是缺乏发达的运动器官，没有或仅有微弱的游泳能力而悬浮在水层中常随水流移动的一类海洋生物。其中，能通过自身光合作用使海水中的无机化合物转化成生物新陈代谢所需有机化合物者，我们称之为浮游植物，不具备这种能力，即必须以浮游植物为饵者则称为浮游动物。据初步统计，世界各大洋中能形成赤潮的浮游生物有180余种，其中在中国浮游生物名录上登载的有63种。
能够形成赤潮的浮游生物有一个别名，这就是人们常说的“赤潮生物”。在被称之为赤潮生物的63种浮游生物中，硅藻有24种，甲藻32种，蓝藻3种，金藻1种，隐藻2种，原生动物1种。在中国，已有赤潮资料记载的赤潮生物达25种。其余的38种在中国海域均有分布，只是尚未形成过赤潮而已。因此说，有赤潮生物分布的海域并非一定会发生赤潮，这要看其密度能否达到足以使局部海域水体变色的水平。
人类活动
随着现代化工、农业生产的迅猛发展，沿海地区人口的增多，大量工农业废水和生活污水排入海洋，其中相当一部分未经处理就直接排入海洋，导致近海、港湾富营养化程度日趋严重。同时，由于沿海开发程度的增高和海水养殖业的扩大，也带来了海洋生态环境和养殖业自身污染问题；海运业的发展导致外来有害赤潮种类的引入；全球气候的变化也导致了赤潮的频繁发生。海水养殖的自身污染亦是诱发赤潮的因素之一。

Ⅳ 当发生赤潮时的浮游生物的密度一般是什么

当发生赤潮时的浮游生物的密度一般是每毫升102到106细胞。赤潮是伴随着浮游生物的骤然大量增殖而直接或间接发生的现象。本来是渔业方面的用语并没有严格的定义，水面发生变色的情况甚多，厄水海水变绿褐色，苦潮按即赤潮海水变赤色。

赤潮浮游生物特点

赤潮是海洋生态系统中的一种异常现象，它是由海藻家族中的赤潮藻在特定环境条件下爆发性地增殖造成的，海藻是一个庞大的家族，除了一些大型海藻外，很多都是非常微小的植物，有的是单细胞生物。

赤潮是一种复杂的生态异常现象，发生的原因也比较复杂，关于赤潮成因尚没有定论，科学家们认为，赤潮是近岸海水受到有机物污染所致，在正常的情况下，海洋中的营养盐含量较低，这就限制了浮游植物的生长有些鞭毛虫类或者甲藻类还是一些鱼虾的食物。

Ⅵ 浮游植物的数量和生物量是怎么计算的

浮游植物的现存量，指的是某一瞬间单位水体中所存在的浮游植物的量。这个量有两种表示方法，用数目单位表示成为密度，一般用万个／升为单位，五、六十年代用之；用重量单位（mg/L）表示的现存量称为生物量（Biomass），70年代以来被广泛使用。

一升水中的浮游植物的数量（N）可用下列公式计算：

）可视为常数，此常数用K表示，则上述公式可简化为：N=K×Pn。Pn代表某种藻类的个数，计算结果N只表示一升水中这种藻类的数量；Pn若代表各种藻类的总数，计算结果N则表示一升水中浮游植物的总数。前者若求浮游植物数量将各计算结果相加即可。

Ⅶ 调查湖泊中藻类种群密度的常用方法

血球计数法可以，我们采用的是，随机取一定容量的水，用药物处理后沉淀，经过一定程序处理后取沉淀物计数，或者有离心机什么的，还有两种方法我不记得了，这种实验我们都只做过一次，实践中不怎么用.

Ⅷ 当发生赤潮时的浮游生物的密度一般是多少

当发生赤潮时的浮游生物的密度一般是102—106细胞/毫升。

赤潮是伴随着浮游生物的骤然大量增殖而直接或间接发生的现象。本来是渔业方面的用语，并没有严格的定义。水面发生变色的情况甚多，厄水（海水变绿褐色）、苦潮（按即赤潮，海水变赤色）、青潮（海水变蓝色）及淡水中的水华，都是同样性质的现象。

构成赤潮的浮游生物种类很多，但甲藻、硅藻类大多是优势种。当发生赤潮时的浮游生物的密度一般是102—106细胞/毫升。在日本近海淡水流入的内湾，自春至秋均有发生。

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赤潮是一种复杂的生态异常现象，发生的原因也比较复杂。关于赤潮成因尚没有定论，科学家们认为，赤潮是近岸海水受到有机物污染所致。

在正常的情况下，海洋中的营养盐含量较低，这就限制了浮游植物的生长（有些鞭毛虫类（或者甲藻类）还是一些鱼虾的食物）。

但是，当含有大量营养物质的生活污水、工业废水(主要是食品、造纸和印染工业)和农业废水流入海洋后，再加上海区的其他理化因素有利于生物的生长和繁殖时，赤潮生物便会急剧繁殖起来，便形成赤潮。

Ⅸ 浮游植物定量及叶绿素a 测定

2.4.2.1 浮游植物定量

个体计数仍是目前常用的浮游生物定量方法。计数浮游生物时，需使用计数框来限定待计数样品的体积或面积，计数框的长、宽、高 (深) 用测微尺或卡尺准确测量。常用计数框有0.1 mL 和1 mL 两种。计数前要将样品充分摇匀，然后用滴管在水样中部吸液移入计数框内。移入之前要将盖玻片斜盖在计数框上，样品按准确定量注入，在计数框中一边进样，另一边出气，这样可避免气泡产生，注满后把盖玻片移正。计数片子制成后，稍候几分钟，让浮游植物沉至框底，然后计数。不易下沉到框底的生物，则要另行计数，并加到总数之内。浮游植物计数时，吸取 0.1 mL 样品注入 0.1 mL 计数框，在 10 × 40 或8 × 40倍显微镜下计数，藻类计数 200 个视野，计数两片取其平均值。如两片计数结果个数相差 15%以上，则进行第三片计数，取其中个数相近的两片平均值。

藻类计数亦可用长条计数法，选取两相邻刻度从计数框的左边计数到计数框的右边成为一个长条。在长条计数法时，方格的底边和顶边分别为计数边和不计数边，统计移过中心垂线的浮游生物。与底边刻度相交的个体，应计数在内，与顶边相交的个体，不计入在内，与底边和顶边刻度都相交的个体，以生物体的中心位置作为判断的标准，也可以在低倍镜下，按上述原则单独计数，最后加入总数之中。计数时，首先旋转目镜的位置使中心线与计数框的一边重叠，再移动载物台，逐步计数。也可用直尺式目镜测微尺进行长条计数，即直尺相当于中心垂线，顶端刻度相当于顶边，底端刻度相当于底边。一般计数 3条，即第 2、5、8 条，若藻体数量太少，则应全片计数。硅藻细胞破壳不计数，硅藻细胞空壳可按中心纲和羽纹纲分别单独计数，但不加入总数之中，仅用于硅藻计数的校正。若计数种属的组成，分类计数200个藻体以上。用划“正”字的方法，则每划代表一个个体，记录每个种属的个体数。个体计数时，单细胞者一个细胞为一个体，定形群体者一群为一个体，不定形群体者按视野内的具体分散状态各定为一个体。本书研究采用长条计数法。

把计数所得结果按下式换算成每升水中浮游植物的数量:

煤矿塌陷塘环境生态学研究

式中:N为每升水中浮游植物的数量(ind/L);A为计数框面积;A_C为计数面积(mm²)，即视野面积×视野数或长条长度×参与计数的长条宽度×镜检的长条数;V_W为1L水样经沉淀浓缩后的样品体积(mL);V为计数框体积(mL);n为计数所得的浮游植物的个体数或细胞数。

2.4.2.2 叶绿素a测定

叶绿素是植物光合作用中的重要光合色素。通过测定浮游植物叶绿素a，可掌握水体的初级生产力情况。在环境监测中，可将叶绿素a含量作为湖泊富营养化指标之一。

(1)水样的采集与保存

可根据工作需要进行分层采样或混合采样。湖泊、水库采样500mL，池塘300mL，采样量视浮游植物量而定，若浮游植物数量较少，也可采样1000mL。采样点及采样时间同“浮游植物”。

水样采集后放在阴凉处，避免日光直射。并立即进行测定前的预处理，如需经过一段时间(4～48h)方可进行预处理，则将水样保存在低温(0～4℃)避光处。在每升水中加入1%碳酸镁悬浊液1mL，以防止酸化引起色素溶解。水样在冰冻情况下(-20℃)最长可以保存30d。

(2)仪器设备

进行叶绿素a的测定时，所需的仪器设备有:分光光度计、真空泵、离心机、乙酸纤维滤膜(孔径0.45um)、抽滤器、组织研磨器或其他细胞破碎器、碳酸镁粉末、90%丙酮。

(3)实验步骤

1)以离心或过滤浓缩水样，在抽滤器上装好乙酸纤维滤膜。倒入定量体积的水样进行抽滤，抽滤时负压不能过大(约为50kPa)。水样抽完后，继续抽1～2min，以减少滤膜上的水分。如需短期保存1～2d，可放入普通冰箱冷冻，如须长期保存(30d)，则放入低温冰箱(-20℃)保存。

2)取出带有浮游植物的滤膜，在冰箱内低温干燥6～8h后放入组织研磨器中，加入少量碳酸镁粉末及2～3mL的90%丙酮，充分研磨，提取叶绿素a。用离心机(3000～4000r/min)离心10min，将上清液倒入5mL或10mL容量瓶中。

3)再用2～3mL的90%的丙酮，继续研磨提取，离心10min，并将上清液再转入容量瓶中。重复1～2次，用90%的丙酮定容为5mL或10mL，摇匀。

4)将上清液在分光光度计上，用1cm光程的比色皿，分别读取750nm、663nm、645nm、630nm波长的吸光度，并以90%的丙酮作空白吸光度测定，对样品吸光度进行校正。即以663nm、645nm、630nm波长的吸光度依次减去750nm的吸光度，作为这3个波长的真正吸光度。

(4)计算方法

叶绿素a的含量按如下公式计算:

叶绿素a(mg/L)=

煤矿塌陷塘环境生态学研究

式中:D为吸光度;V₁为提取液定容后的体积(mL);V为水样体积(L);δ为比色皿光程(cm)。

Ⅹ 0.05ml浮游动物计数框怎么计数

把您的产品图片传上来，我帮您看看呢。国内一般浮游动物计数是2种计数框：1毫升计数框计数甲壳类0.1毫升计数框计数原生动物（样品处理同浮游植物一起即可），5毫升或10毫升偶尔用。