1. 影响组织培养的因素有哪些
1.植物的材料
（1）不同的植物组织,培养的难易程度差别很大.例如,烟草和胡萝卜的组织培养较为容易,而枸杞愈伤组织的芽诱导就比较难.
（2）同一种植物材料,因器官来源及乱慧弯其生理状况、材料的年龄、保存时间的长短等也会影响实验结果.
2.培养基
离体的植物组织和细胞,对营养、环境条件要求相对特殊,需要配制适宜的培养基.植物组织培养常用MS培养基,其主要成分包括：
（1）无机营养：
大量元素：除了C、H、O外还有N、S、P、Mg、K、Ca等
微量元素：Fe、Mn、B、Zn、Cu、Mo、Co、I等
（2）有机营养
维生素、Aa、琼脂、活性炭、烟酸、肌醇、蔗糖等
（3）植物激素
植物激素中生长素和细胞分裂素是启动细胞分裂、脱分化和再分化的关键性激素.在生长素存在的情况下哗闷,细胞分裂素的作用呈现加强的趋势.按照不同的顺序使用这两种激素,会得到不同的实验结果碧闹.
当同时使用这两种激素时,两者用量的比例影响植物细胞的发育方向.
（4）能量和渗透压
通常植物本身进行光合作用,产生糖类,不需要从外部供给糖,但在植物组织培养进行异养的状况下,大多不能进行光合作用来合成糖类,因此必须哎培养基中添加糖（一般是蔗糖）,作为碳源和能源物质,同时糖对保持培养基的渗透压也有重要作用.
（5）PH
3.温度
温度是植物组织培养中成功的重要条件.在植物组织培养中大多采用最适温度,并保持恒温培养,以加速生长.通常采用25加减2摄氏度的温度,对大多数植物来讲是合适的,但也因种类而异.进行菊花组织培养时是18~22度.
4.光照
不同的植物对各种条件的要求往往不同.组织培养中光照也是重要条件,它对生长和分化有很大影响.当然这也和材料的性质、培养基情况以及由于光照而引起的温度上升等方面的因素有关.菊花培养的光照强度为1000~4000lx,每天光照12h.
2. 影响植物生命活动的因素有哪些
内因——植物本身的遗传特性、内源激卜贺清素； 外因——光、温度、水分等非生物因素拍肆和生物因素（种内互助、种内斗争、竟型前争、寄生、共生、捕食等 生物因素）
3. 植物材料在干制过程中发生衰变的因素有哪些
植物材料在干制过程中发生衰变的因素有湿度、温度。
因为如果保存的湿度温悄行度不当的话，这散悄些植物性原料在干制过程中可能会发生发霉甚至衰变。所以植物材料在干制过程中发生衰变的因素有湿度、温度。
衰变是是属于核物理学的研究范畴，核物理学启掘哗也属于物理学。
4. 影响植物形态.生理.分布的因素有哪些
因素包括：阳光（光照时间、强度）、空气（CO2浓度、O2浓度）、水分、土壤（无机盐有机腐殖质碧亩）、温度、湿度等多种因素，它们对生物的形态、生理和分布产生着影响悔茄森。
种群的空间分布格局有3种：均匀分布、随机分布、成群分布。
均匀分布形成的原因主要是种群内个体间的竞争。
随即分布指的是每一纳察个体在种群领域中各个点上出现的机会是相等的，并且某一个体的存在不影响其他个体的分布，这种分布多出现在资源分布均匀、丰富的情况下。
成群分布形成的原因有：1 资源分布不均匀。2 植物种子传播方式以母株为扩散中心。3 动物的集群行为。
5. 植物组织培养常见问题解析
1. 培养基的配制注意事项
植物组织培养最常用到MS培养基，包含十几种化合物。因为有些化合物相遇会发生化学反应产生沉淀，影响培养基的营养成分，准备MS培养基需要配制多种高倍母液。且配制母液时，尤其涉及大量元素的母液时，一定要等一种成分溶解之后，再缓慢的添加另一种成分，切记“一锅煮”，即不能将各种化合物一齐添加进去。可选用Coolaber的MS培养基基盐（PM1011）在自行加入蔗糖和琼脂配制MS培养基，既经济，更高效。
2. 灭菌后培养基不凝胶或者凝胶偏软
植物凝胶、琼脂都对酸性条件敏感，pH值低于5很难成胶或凝胶偏软，切记高压灭菌前调节培养基pH值（5.5-6.0）。植物凝胶对二价阳离子浓度有要求，也就是相对于MS培养基，1/2MS培养基中植物凝胶要适当增加用量。另外灭菌后，倒出培养基前一定将培养基摇匀（ 带防烫手套 ），因为是琼脂密度大底层含量高，容易造成培养基强度不均匀。选择Coolaber改良MS培养基（PM10121，pH5.8±0.2）含蔗糖和 琼脂/植物凝胶 ，可以省去调pH步骤。
3. 水解酪蛋白有酸水解和酶水解之分，在使用过程中有无区别？
水解酪蛋白对胚状体、不定芽的分化有良好的促进作用，通常用量在500mg/L，不管是酸解还是酶解，作用都是一样的，酶解更有利于发挥其作用。
4. 怎么溶解组培常用植物激素？
IAA、IBA、GA、玉米素、多效唑等应先溶解于少量95%的乙醇中，再加水定容配制成母液；如有结晶析出，可考虑用1/10体积的乙醇溶解后再定容；2，4-D易溶于碱性水溶液，可用少量1mol/L的NaOH溶液溶解后再慢慢加水定容；KT和6-BA先用少量的HCL溶解，再加水定容到一定的浓度。
5. 细胞分裂素使用浓度？
一般情况下在培养基中加入0.1 10.0mg/L的细胞分裂素（6-BA/KT/ZT)，多数用1.0 2.0mg/L，KT浓度为0.5~2mg/L，这个也要根据实验材料来调整。细胞分裂素可以单独使用也可以与细胞生长素配合使用。
6. 哪些植物激素能高压灭菌，哪些不能高压灭菌。
IBA、NAA、6-BA、2,4-D可高温高压灭菌。 IAA、GA3、茉莉酸等不可高温高压灭菌，否则会分解失效，该类植物激素配制母液后需用0.22微孔滤膜过滤除菌，待培养基冷却（50-60℃）后尚未凝胶前加入混匀。
7. 培养基的pH值会凝胶硬度有无影响。
有影响。若将培养基pH值调的过高（大于6），则培养基偏硬，增加接种的阻力，会对外植体造成损伤。若将培养基pH值调的过低（小于4.5），则培养基不能凝固，起不到固定外植体的作用。一般将培养基的pH调节至5.5~6.0为宜。
8. 灭菌过程会否影响培养基的pH值？
培养基中的蔗糖和激素在高温灭菌过程中容易酸化，培养基pH值灭菌后会有所下降，灭菌前培养基的pH值偏低可能导致培养基不凝或偏软。要求偏酸性的培养基可适当增加琼脂或植物凝胶的用量。
9. 应用75%的酒精进行种子消毒的过程中需要注意的问题
种子在消毒过程中使用75%的酒精使用应慎重，酒精渗透力极强，消毒时间过长会直接影响种子发芽率，所以建议消毒时间不应超过1min。
10. 原始繁殖材料的消毒
组培中，作为原始繁殖材料的外植体消毒，直接影响整个培养过程的进行。从室外采回来的外植体需进行消毒，首先用自来水冲洗外植体，冲洗时间可根据采集部位不同而定，一般在5 15分钟即可；关键在于在超净台中进行药剂的处理，常用的药剂处理有70%的乙醇溶液、9%的次氯酸钠溶液、和0.1 0.2%的升汞溶液，具体可根据实验材料罩铅而定。应注意的是经升汞灭菌的外植体必须用无菌水冲洗6~8次。
11. 怎么处理植物组织培养过程中出现的各种污染？
植物组织培养过程中的污染来源主要分为3种，真菌、细菌和组织培养过程中的污染源。在操作过程中，难免有菌落入培养基或植物材料上，而导致污染。另外，不正确操作也会增加污染机率。预防蔽闷胡措施：通风，保持室内空气干燥，紫外宏拦杀菌等。污染物品和污染培养基不要在培养室近距离开瓶洗刷。
污染原因判断：
（1） 培养基污染 若污染菌类是零星分散在培养基中，则可确定是人为引起的污染。比如培养基灭菌不彻底，开瓶时间过长，灭菌后存放时间过长等； 高温蒸汽灭菌器的温度、压力、时间没有正确设置；过滤灭菌过程中滤膜孔径选择、过滤灭菌器的灭菌处理、过滤灭菌操作等均会影响培养基的灭菌效果。
措施：严格按照实验要求，灭菌规程操作。
（2）外植体污染 若污染菌类是从材料周围长起，且发生在5天以后，则说明是材料带的内生菌。可能是接种用具灭菌不彻底，接种时材料被污染；若从培养基以下开始长菌，发生时间较早，且有从里向外的趋势，则说明是切口引起的污染，原因可能是未剪去两个切口或者虽剪去切口但是所用器具带菌；或者是未及时发现污染苗，接种过程中引起交叉污染；
措施：取材时应仔细选择，以减少污染的发生。
（3）操作环节污染 接种室是否清洁、干燥、密封，是否经常用紫外灯照射、甲醛熏蒸、70%的酒精喷雾杀菌等；超净工作台摆放物品杂乱，长时间不换滤网，导致净化能力降低；接种用具灭菌不彻底引起污染；操作不正确等。
措施：每次接种前半个小时，用****20%****的新洁尔擦洗室内设备、工作台面，再用紫外灯照射****20min****。还可以喷洒****70%****的乙醇进行消毒。除了培养基、接种材料、器具和用具保证无菌外，同时在接种时还需要严格进行无菌操作。
出现污染后处理措施：
（1）真菌污染后，如果已形成孢子，则必须经高压灭菌后扔掉；若使细菌污染，只要及时发现，将材料上部未感染菌的部分剪下转接，材料仍可以用。
（2）用抗生素等杀菌药剂的处理。但至今还未发现哪种抗生素能够对各种菌都有效，并且常常也会影响植物材料的正常生长分化。另一些药剂，虽有的杀菌效果好，但往往容易引起盐害，也无法利用。
12. 外植体的选择
为了使接种后的诱导得以成功，选择的外植体应该是幼嫩的，处于生长旺盛时期的，而且选择的外植体的体积不能过小，如若过小则会影响愈伤组织的形成，从而影响进一步的分化。因此，一般接种的外植体体积在0.5~1.0cm 2 的范围内即可。最适的为茎尖、带芽茎段，也可以利用叶子、子叶、根段、花器官组织等。
13. 植物茎段组织培养需要注意哪些问题
以茎段进行组织培养比较容易，一般取植物的嫩茎切段作为外植体，切成0.5~1cm长的小段进行接种，保证每个茎段有一个芽点和一片叶子，将芽点部位以下垂直插入培养基凝胶中进行生根培养。
14.外植体接种需要注意的操作事项
接种前首先进行灭菌消毒，接种所用的镊子、解剖刀、剪刀等工具需要提前高温高压灭菌，提前10分钟打开超净工作台，灭紫外15~20min，操作人员要用75%的酒精棉球擦手、工作台和器皿，解剖刀和镊子等随时擦酒精灼烧，晾凉后备用。在无菌培养皿中或滤纸上切割外植体，接种到培养基表面，注意瓶口倾斜接近酒精灯火焰。
15. 组织培养中材料褐化现象
不同品种以及生理状态引起的褐化状态不同。培养基过高浓度的无机盐及高水平细胞分裂素会使褐化现象加重。培养条件不当，例如光照过强、温度过高、培养时间过长等，均可使多酚氧化酶的活性提高，从而加重外植体的褐变程度。
防治措施： 选择合适的外植体。选择生长处于旺盛的外植体，可以使褐变现象明显减轻。合适的培养条件，无机盐成分、植物生长物质水平、适宜温度、及时继代培养均可以减轻材料的褐变现象。使用抗氧化剂，在培养基中，使用半胱氨酸、抗坏血酸、PVP等抗氧化剂能够较为有效地避免或减轻很多外植体的褐变现象。另外使用0.1% 0.5%的活性炭对防止褐变也有较为明显的效果。连续转移，对容易褐变的材料可间隔12 24小时的培养后，再转移到新的培养基上，这样经过连续处理7~10天后，褐变现象便会得到控制或大为减轻。
16. 材料玻璃化问题
植物材料不断地进行离体繁殖时，有些培养物的嫩茎、叶片往往会呈半透明状，呈水迹状，这种现象通常称为玻璃化。玻璃化为试管苗的生理失调症，试管苗生长缓慢、玻璃化的嫩茎不宜诱导生根，繁殖系数有所下降。当培养基上细胞分裂素水平较高时，容易出现玻璃化现象。愈伤组织的玻璃化问题主要表现在培养过程中愈伤组织松散，脆易碎。叶子或是长出的愈伤一段时间后在其周围出现水渍化，继而影响整个培养基。
防治措施: 在培养基中添加少量聚乙烯醇、脱落酸等物质，降低培养基中细胞分裂素含量及含氮化合物的用量，选用低NH 4 + 水平的B5培养基，都能够在一定程度上减轻玻璃化的现象发生。增加光照，对减轻试管苗玻璃化的现象有明显的作用；在培养基中添加活性炭、马铃薯汁、间苯三酚等可有效的减轻和防止玻璃化。
**17. 材料水浸状、变色、坏死、茎断面附近干枯 **
可能原因： 表面杀菌剂过量，消毒时间过长，外植体选用不当（部位或时期）。
改进措施： 调换其他杀菌剂或降低浓度，缩短消毒时间，试用其他部位，生长初期取材。
18. 材料长期培养几乎无反应
可能原因： 培养基不适合，生长素的选择和用量不当，植物激素对生长发育和生理过程的调节作用，往往不是某一种植物激素的单独效果。环境温度不适宜。
改进措施： 更换培养基或调整培养基成分，尤其是调整盐离子浓度；调整激素的种类与配比，增加生长素用量，例如使用人工合成的生长素类似物2，4-D等可有效促进细胞分裂和伸长，新器官的分化和形成；调整培养温度等环境条件。
19. 愈伤组织生长过旺疏松
可能原因 ： 由于培养基中激素添加过量，培养室温度偏高，矿物质等无机盐含量不当等因素引起的。
改进措施 ：根据不同的品种、不同组织、不同器官，应适当减少激素用量，适当降低培养温度，调整无机盐（尤其是铵盐）含量，适当提高琼脂用量增加培养基硬度，避免愈伤组织生长过旺和疏松现象发生。
20. 愈伤组织生长缓慢太紧密
可能原因：细胞分裂素和生长素的用量过多，糖浓度过高。
改进措施：减少细胞分裂素用量，调整细胞分裂素与生长素比例，降低糖浓度。
21. 愈伤组织分化率低，畸形，分化出的芽多为叶状芽或丛芽，芽生长困难，不易成苗。培养时间长时，再次愈伤组织化
可能原因 ：生长素用量偏高，温度偏高。
改进措施 ：减少生长素用量，可以通过分化培养时在培养基中添加GA 3 （浓度在0.5~2mg/L之间）解决，并适当降低愈伤组织的培养温度。
22 丛生苗过于细弱，不适于生根或移栽
可能原因：细胞分裂素浓度过高或赤霉素使用不当，产生过多的不定芽；温度过高，光照短，光强不足；不及时的转移和分切，生长空间小。
改进措施：减少细胞分裂素用量，免用赤霉素；延长光照时间，增强光照；及时转接；降低接种密度；更换透气的封口膜等。
23. 组织培养过程中出现黄化
引起黄化的主要原因是培养基中Fe的含量不足，各种矿质营养不均衡；培养环境通气不良，瓶内有害气体积累（乙烯、氨气、甲醛）等会引起植物材料黄化脱落；激素配比不当；糖用量不足或长时间不转移；pH值变化过大；培养温度不适；光照不足等。
改进措施： 改善组培条件，在配制培养基过程中检查仪器设备是否准确；降低组培苗的接种密度，及时转接培养物；使用透气的封口膜改善瓶内通气状况；适当调节pH值、激素配比和无机盐浓度；控制培养室内温度，适当增加光照。
24. 植物组培培养基都有哪些？
MS培养基 ：1962年穆拉辛格和斯库格为烟草细胞培养而设计，其中硝酸盐的浓度高，适合植物原生质体、细胞和组织培养。 B5培养基：1968年甘伯尔格为大豆细胞培养而设计，铵的浓度低。适合木本植物的组织和细胞培养。
富盐平衡培养基 ：是目前使用最广泛的一类，特点是：无机盐浓度高，微量元素种类齐全，浓度高；元素间比例适当，离子平衡性好，具有较强的缓冲能力、稳定性好、营养丰富，一般培养时无需再加入有机成分。
高硝态氮培养基 ：代表性培养基有B5、N6、SH。特点是：硝酸钾浓度高，氨态氮浓度低，含有较高浓度的硫胺素（VB1）。
中盐培养基 ：大多是在MS培养基基础上进行改良设计。特点是：大量元素无机盐为MS的一半，微量元素种类减少、含量增高。维生素种类比MS增多，例如增加了生物素、叶酸等。
低盐培养基 ：特点是：无机盐、有机成分含量浓度低，多用作生根培养的培养基。
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25. 木本植物（油料植物）组织培养中遇到再生苗无法生根时怎么办？
一般常用的1/2MS或者1/2WPM基本能够满足。如果增殖用的基本都生产正常，到生根的时候出现落叶，只能通过排除法一样样分析。首先看下是不是培养温度太高，使用瓶盖后透气性差，导致乙烯积累。其次，可以适当添加少量分裂素，或者更换生长素，以及多种生长素混合使用。
26. 培养基中添加糖类作为碳源物质，有何重要作用？
同样作为碳源为植物细胞提供能量来源，蔗糖较葡萄糖能更好地调节培养基内的渗透压。微生物生长所需的碳源最常用的是葡萄糖，采用蔗糖作为培养基的碳源，可一定程度上减少微生物的污染。生长素和蔗糖浓度决定愈伤组织中维管束的类型与数量。
27. 用于植物原生质体制备的材料，以及常用的渗透压调节剂
用于植物原生质体的材料需要选取生长旺盛的细胞，幼嫩的组织。无菌试管苗的叶片、胚轴及子叶、花药，以及愈伤组织（悬浮细胞）等。常用的调节原生质体渗透压的稳定剂主要有甘露醇、山梨醇、葡萄糖、蔗糖等。渗透压浓度一般为0.3~0.8 mol/L。
28. 组培苗移栽需要注意的问题
在移栽前打开三角瓶的封口膜，炼苗3 5d后取出小苗，用流水洗净根部的培养基，然后移栽到盛有灭过菌的蛭石的营养钵中过度一下，但要注意不可直接向营养钵中浇营养液（容易长菌），用透明的塑料薄膜罩住小苗3 5d后移栽到土里。
29. 光照强度多少lux是如何计算的
光照强度=光通量/单位面积。Lux的换算比较抽象，一般以烛光为计算单位，现在所用的以电源发光的光源，记作国际烛光，即25瓦特的电灯其光强度等于25国际烛光。1标准烛光=10.76 Lux。
30. LED光源在植物组织培养中的选择
光是植物生长中最重要的环境因子之一，并不是所有的光都有助于植物的光合作用。LED光源460nm左右的蓝光和660nm左右的红光是植物最需要的光波，对植物的生长发育起着关键性的作用。
6. 植物性食品原料的生理变化特征有哪些
植物性原料的质量变化就主要是这三种作用。呼吸作用,会减少原料内的有机物，降低原料的品质。后熟作用，主要是指一些种子类的原料，这些种子植物生长与发育两者有区别与联系：
1、植物生长是指生物体在一定的生活条件下缺绝体积和重量逐渐增加、由小到大的过程。生长是发育的一个特征。
2、植物发育即植物的个体发育﹐指植物生命所经历的全过程。
3、植物的生长和发育是相互紧密联系的。他们不是处于生活周期的不同时期，而是共同处于一个植物体中相伴发生的。
4、而生长的量变过程伴随着质的变化，而发育的质变过程中也需要生长的量变作基础。生长为发育奠定基础，发育则是生长的必然结果。
5、生长和发育相辅相成，密不可分。从分子生物学的观点来看，植物的生长，分化和发育的本质是基因按照特定的程序表达引起植物生理生化活动和形态上的变化。
一、植物生长：生伏游姿物体由小到大的过程即生长。
1、多细胞生物体的生长，要从细胞分裂和细胞生长两方面来考虑。是指细胞繁殖、增大和细胞间质增加，表现为组织、器官、身体各部以至全身的大小、长短和重量的增加以及身体成分的变化，为量磨族的改变。
2、单细胞生物的增殖也具有同样的关系。在细菌学的领域里，个体数的增加也称为生长。
二、植物发育即植物的个体发育。指植物生命所经历的全过程。
1、从受精卵的最初分裂开始﹐经过种子萌发﹑营养体形成﹑生殖体形成﹑开花﹑传粉和受精﹑结实等阶段﹐直至衰老和死亡。
2、但一般以种子萌发为开始阶段。构成植物个体的细胞和器官也有其自身发端﹑形成和衰老的发育过程。发育包括生长和分化。生长指植物细胞﹑组织和器官在数量上的不可逆的增加。
3、分化是在生长过程中发生细胞的特化﹐即从同一性质的细胞类型转变成结构上与功能上不相同的细胞类型﹐如薄壁细胞分化成厚壁细胞﹑木质部﹑韧皮部等。细胞分化的结果是建成各种组织和器官。从营养体到生殖体的转变即花芽分化﹐是植物一生中十分重要的分化过程。