❶ 如何做好实验室生物安全管理工作
管理机构及管理职责
(1)设立(校级)实验室安全管理委员,负责全校实验室生物安全管理。
(2)委员会下设办公室,负责全校生物安全管理日常工作和生物安全应急处置工作。
(3)各院系、医院或从事相关工作的其他二级机构,设立实验室生物安全管理领导小组,实行领导小组领导下的实验室管理负责制。
(4)各二级单位的法人代表,对该单位生物安全负有完全责任。
(5)实验室主任、教学实验中心主任、课题负责人、实验教学主讲老师为所在实验室的生物安全负责人,负责确保实验室设施、设备、个人防护设备、材料等符合国家安全有关安全要求,评估实验室生物材料、样本、药品、化学品、化学品和机密资料被丢失或不正当使用的危险,并对其定期检查、维护和更新,以保障实验室教学和科研工作的正常运转。
生物安全级别与实验室设置
具有感染威胁的生物危险度分为四级,级别越高,潜在危险越大。一般高校或研究所所涉及的是一级或二级生物安全水平的基础实验,更高级别生物安全威胁的实验很少开展,如需要进行更高级别生物安全威胁的实验,必须向学校相关领导机构通报,实验室相关设施及操作必须严格按照世界卫生组织制定的《实验室生物安全手册》(第三版)执行。
(1)危险度1级(无或极低的个体和群体危险)不太可能引起人或动物致病的微生物。
(2)危险度2级(个人危险中等,群体危险低)病原体能够对人或动物致病,但对实验室工作人员、社区、牲畜或环境不易导致严重危害。
(3)危险度3级(个体危险高,群体危险低)病原体通常能引起人或动物的严重疾病,但一般不会发生感染个体向其他个体的传播,并且对感染有效的预防和治疗措施。
(4)危险度4级(个体和群体的危险均高)病原体通常能引起人或动物的严重疾病,并且很容易发生个体之间的直接或间接传播,对感染一般 没有有效的预防和治疗措施。
根据国家对实验室生物安全分类管理规定,将实验室分为Ⅰ级,Ⅱ级,Ⅲ级,Ⅳ级,实验室的设置应报国家有关部门批准,确定实验室级别,取得相应资格证书。
生物安全工作
(1)实验室应制定意外事故的应对程序和突发事件德应急预案,应急预案应报学校“实验室生物安全管理委员会”办公室备案。
(2)实验室安全管理负责人有责任监督实验室工作人员对易燃、易爆、有毒、放射性物品和病原体微生物等进行确认,分类管理,安全存放,随时监控。
(3)实验室安全管理人员应记录实验室危害评估的结果及所采取措施,发现问题应及时上报实验室管理领导小组。
(4)实验室安全管理人员必须对本实验室操作有害材料的安全行为进行全过程监督和记录,提供生物安全指导。
(5)对于高风险核污染材料应严密控制,专人管理,并有采购、使用记录等,防丢失或遗失。
(6)所有废弃物用使用可靠方法处理。
(7)实验室安全管理负责人有义务督促使其实验室的工作人员进行定期的健康检查。
(8)不得擅自改建实验室或改动实验室设置,确需改建或变更设置的,要对生物安全影响进行评估,经相关部门批准后,报学校实验室生物安全管理委员会办公室备案。
(9)定期向公众进行不同形式的生物安全教育,对相关实验室工作人员进行分级培训。
答案来自
❷ 什么是控制采集场所和检测实验室生物安全的关键环节
医疗废物的处理是控制采集场所和检测实验室生物安全的关键环节。
医疗废物处理。核酸检测各环节均产生医疗废物,做好医疗废物收集、包装、无害化处理、暂存、交接和转运等工作,使用双层包装袋盛装医疗废物,有效封口,确保封口严密,确保医疗废物包装无破损、无渗漏。
1、基本要求。新冠病毒样本采集场所和开展核酸检测的实验室应当制定医疗废物处置流程。所有的医疗废物必须按照统一规格化的容器和标示方式,完整且合规地标示废物内容。应当由经过培训的人员使用个人防护装备和设备处理医疗废物。
2、医疗废物的处理措施。医疗废物的处理是控制采集场所和检测实验室生物安全的关键环节,必须充分掌握涉及生物安全的相关分类,并严格执行相应的处理程序。
《全员新型冠状病毒核酸检测组织实施指南(第二版)》
组建工作队伍。
1、组建各级核酸采样、样本运送、核酸检测、信息平台技术保障和相应的应急等队伍,明确采样和检测责任区域,全省任一地方启动全员核酸检测时,能立即投入开展工作。各应急队伍保证24小时在岗待命,做好随时出发的各项准备。
2、成立核酸采样督导组,采用分片包干的形式巡回指导各采样点,规范采样、个人防护和交叉感染防控等相关工作,及时发现问题、解决问题,保障采样高质高效。
3、成立核酸检测督导组,组织临床检验专家建立巡查蹲点督导机制,对各实验室开展巡查,对第三方核酸检测机构进行蹲点督导。
4、成立数据专班,核酸检测信息统一归口管理,确定核酸检测信息流转流程,专人收集、专人统计、专人上报,提高信息流转效率和准确性。
以上内容参考网络——全员新型冠状病毒核酸检测组织实施指南(第二版)
❸ 如何加强血源管理
1 严格执行国家和军队法律法规
为确保血液和输血安全,国家和军队对献血者体检、血液化验项目等实验室质量管理制定了多项法规和标准。根据军队血站的特殊性,既要在平时担负血液的采集、检验、分离、储存和供应任务,还要作为战区血站承担战备血液采供任务的卫勤保障职责。在采供血过程中,我们在严格执行各项法规和标准基础上,加强对血液采集、加工、供应、临床输血、输血反应反馈及血液治疗疗效分析等实施全程质控,建立了由中心级(医务处、质控科、感控科)、科级(站长或科主任)、组级(质控员)具体负责和全体工作人员参与落实的严格的三级质量控制体系,制定实施各项质量管理制度、各类岗位职责、标准操作规程和相配套的工作质量记录,把采供血的各个环节、过程均纳入规范化管理轨道。
2 规范血站质量管理
2.1 血液采集中的质控管理 军队血站主要在部队驻地集中采血,部队官兵中也存在较高的血源性传染病标志物阳性率〔3�5〕,且有些驻地路途较远,条件较差,采血容易受污染,加之血站人手偏少,常需在短时间内完成大量工作,因此为保证采集血液质量,必须对采血各个环节严加控制。做好每次出发前准备工作,如校验采血仪器,备好所需试剂、物品,检查血袋质量,备好献血证等;通知献血者做好采血前卫生、饮食及心理准备;在采血过程中,力求室内采血,严格落实无菌操作,认真查对,记录完整,保证所采血液质量。
2.2 血液运输及制备、保存中的质控管理 由于下部队采血运输时间较长,加强途中管理尤其重要,谨防血液污染。在血液采集后,立即放入2~6℃冰箱,及时用冷藏运血箱运回血站。在成分制备时要注意温度控制,新鲜冰冻血浆须在规定时间内制备完成,并保存在-35℃的深低温冰箱里;对采血后超过6h所分离血浆,作为普通冰冻血浆使用;血小板在采集后立即放入规定温度的振荡箱中;红细胞保存在2~6℃的冰箱中。贮血设备采用有温控及报警系统的贮血专用冰箱,并随时注意查对和观察血液质量。所有血液都必须经过初检、复检两次检测合格后才能入库,按血型、品种、 规格和采血日期分类存放,建立完整的档案。
3 提高血液检测水平
3.1 提高仔喊血液实验室筛查的准确性与敏感性,保证血液质量和安全 我们血站采用先进的全自动化设备和高质量进口的敏感检测试剂,对ABO血型和Rh血型、乙肝表面抗原(HbsAg)、丙肝抗体(HCV�Ab)、艾滋病抗体(HIV�Ab)、谷丙转氨酶(ALT)、梅毒6项试验进行常规检测,初检和复检均使用不同公司生产的试剂,这些检测自样品条码录入、样品添加量、反应时间、反应温度、试验结果读取、试验结果汇总及检验报告发出等环节全部实现自动化控制和计算机管理,杜绝了人为操作误差,保证了血液筛查过程准确无误。
由于部队集中采血的特殊性,血站大多实行先采血后检验,即采用两套不同试剂、由不同检验者同时进行初、复检,对任何一次检验结果异常者均作报废处理。进行血液初、复检,检测结果均经2人以上相互查对,站长(科主任) 把关,血液才能入库或报废。同时引进和使用新的能减少病原体传播的血液制剂加工方法,如制备去白细胞制剂、血浆病毒灭活技术,应用NAT方法中的定量PCR技术对血液制品HCV�RNA、HIV�RNA的抽检等,最大限度地杜绝经血传播疾病〔6�8〕。
初、复检均由取得国家认可检验证书的人员操作,并定期进行各类培训,保证实验室工作人员良好的工作责任心和操作技能。定期对检测设备、辅助设备进行校准检定,严格依据并执行管理体系建立的设备强制性检测和日常检测程序要求。精密仪器和出具检验报告的设备每年校准一次,发现异常情况随时进行校准,对机械性设备按规定调试。可自行校验的部分设备,遵从仿戚谨规范校验的标准化操作规程(SOP),如对加样枪、玻璃温度计等的自行校验。为保证仪器正常运行,我们将设备日常维护纳入到SOP中,按时正确地进行维护,以持续保证整个实验室的工作质量。
3.2 加强血站实验室的室内质控和室间质评 严格进行室内质控(IQC),建立实验室日常差错管理程序和记录,医院三级质控人员定期、不定期对所有工作环节与血液产品质量进行检查与监测,如采血检测、成分制备、贮存运输和血液发送等;对血液制品容量、比重、外观、各种有效成分含量、细菌培养等进行严格的监测,保证产品的安全与有效。运备基用“双质控法”〔9〕,在更换检查与监测过程中防止不合格项或潜在不合格项的试剂。在开展室内质控的同时,积极参加卫生部临床检验中心及军队、省临床检验中心、疾控中心(CDC) 的室间质评(EQA),校准实验室结果和验证设备的正常运行情况。
4 加强站内外质量安全控制
4.1 站内消毒质量安全控制〔10�11〕 根据有关文件血站制定了与感染有关的管理制度,包括实验室、无菌室、供应室、组装室、机采室、冷冻室、仓库等管理制度,《站内感染监控制度》、《AIDS登记和报告制度》、《消毒管理制度》,医疗废物、报废血浆的管理细则等。由三级质量控制体系成员检查、监控各种制度具体落实情况,对存在的问题,提出整改的建议,使各项指标达到国家标准的要求。重点对采血、成分制备环境进行微生物学监测,每月对采浆室和工作间的消毒机在采浆前、中、后进行空气细菌培养,并将结果记录存档;对血浆的冷冻贮存和运输箱进行消毒效果的监测。加强一次性医疗用品的管理,建立一次性医疗器具的消毒、毁形和无害化处理记录,避免其重复使用和流入社会。
4.2 血液配发过程和站外质量安全控制 文献〔6〕报道,在血液安全事故和差错中,50%为人为差错,其中血液发出后的站外差错远高于站内差错,为此,我们在血液配发过程和发出后均进行严格的血液质控跟踪管理〔12〕。输血时严格按照取血、发血制度和操作规程,进行双查双对,双方签字,防止因误发误输而造成输血反应等严重差错事故。对输血者和献血者血样均要留样冰冻保存到规定时间。输血过程中严格无菌操作,严禁输血中向血内加入任何药物,以免引起溶血或细菌污染。对护士和相关医务人员进行与输血相关业务培训,对人为输血差错进行责任追究等。
5 建立有效的实验室安全防护和职业预防
在严格执行卫生部《医务人员艾滋病病毒职业暴露防护工作指导原则(试行)》基础上,建立了与血站职业暴露有关的实验室内感染管理制度、消毒隔离制度、实验室安全工作制度,尽最大限度地杀灭工作环境中的感染性病原体,减少其与工作人员接触的机会;在对工作人员培训的过程中强化安全意识,严格按SOP操作。加强工作人员防护,提供主动和被动免疫,建立工作人员健康档案;对实验室工作人员每年一次检测HIV、HBV、HCV、TP等病原体,并对血样保存1年。工作人员发生职业暴露后立即处理,同时评估暴露级别,进行科学合理的物理或药物处理〔10�13〕。
总之,血站全程质量安全管理是一个系统工程,系统运行的好坏直接决定血液质量和实验室安全。建立并保持高效的管理体系,严格操作规程,加强教育,对保障血液质量和用血安全,最大限度地预防和减少血源性疾病传播有着重要意义。
❹ 血站质量管理规范(2)
血站质量管理规范
11.4.5应明确规定电子签名的使用范围、形式,以及电子签名制作数据的生成方式、接收和认可方式,保证电子签名的可靠性。严格控制在签发后对数据电文的改动。
11.5应建立和实施保密制度,对献血者的个人资料、献血信息、血液检测结果以及相应的血液使用信息等应进行保密,防止未授权接触和对外泄露。
12. 监控和持续改进
12.1 建立和实施质量体系的监控和持续改进程序,以保证质量体系有效运行和持续改进。
12.2 建立和实施采供血过程和血液质量控制程序,以确保采供血和相关服务过程以及血液质量符合预期要求。
12.3 建立和实施确认程序,对新的或者有变化的过程、程序、设备、软件、试剂或者其它关键物料进行系统检查,以保证在正式使用前符合预期的使用要求。确认应按预定的计划进行。确认完成后应形成确认报告。确认报告应包括确认计划、确认的数据和确认的结论。
12.4 建立和实施不合格品控制程序,确保能够及时发现、标识、隔离、评价和处置不符合要求的血液和物料等,防止不合格品的非预期使用。
12.5 建立和实施不合格项的识别、报告、调查和处理的程序,确保能够及时发现、识别不合格项,分析产生偏差的原因,采取措施消除产生不合格项的原因,防止类似不合格项的再次发生。
12.6 建立和实施内部质量审核程序。内部质量审核应覆盖采供血及相关服务的所有过程和部门。内部质量审核应预先制定计划,规定审核的准则、范围、频次和方法。内部质量审核包括对质量体系的审核和对质量体系执行状况的审核。
12.7 内部质量审核员须经过培训,具备内审员相应的资质和审核能力,并且与受审核方无直接责任关系。内部质量审核员须经法定代表人任命。
12.8 内部质量审核完成后应形成审核报告,内容包括审核情况和评价、不合格项及其纠正措施和预防措施。
12.9 应对纠正措施和预防措施的实施及其效果进行追踪、验证和记录。
12.10 在质量体系内审完成后,组织管理评审,以确保质量管理体系持续运行的适宜性、有效性和充分性。管理评审的结果及其相应措施须予以记录,法定代表人就所涉及的内容作出总结,探讨持续改进契机,指示今后质量工作的方向和改进目标。质量负责人编写管理评审报告,经法定代表人批准,并发放至相关部门,确保有关措施在规定的时限落实。管理评审每年至少进行一次,可根据实际需要增加管理评审次数安排。
13. 献血服务
13.1 建立、实施、监控和改进献血服务质量体系,确保为献血者提供安全优质的献血服务,从低危人群中采集血液,确保血液的质量。
13.2 建立和实施献血场所管理程序,保证献血安全和血液质量。献血场所应有充足的设施,布局合理,能满足献血工作和献血者以及员工的健康和安全要求。献血前征询和体格检查应对献血者的隐私和相关信息进行保密。应具有处理献血不良反应的设施和药品。每个采血工作位应有独立的采血、留样、记录、贴标签的操作设施和缜密流程,消除导致献血者记录或标识差错的潜在因素。
13.3 建立和实施献血者招募指南,以自愿无偿的低危人群作为征募对象,确保献血者教育、动员和招募工作的实效性,鼓励自愿定期无偿献血。
13.4 由接受过培训的医护人员依据《献血者健康检查要求》,对献血者进行健康征询和评估,保证不影响献血者健康以及血液的安全性和有效性。健康征询和健康检查完成后应由献血者和检查者共同签名。检查者应做出献血者是否能够献血的判断。
13.5 建立和实施献血者献血后回告受理和保密性弃血的处理程序。建立和实施对有易感染经血液传播疾病危险行为的献血者献血后的报告工作程序、献血屏蔽和淘汰制度。
13.6 建立和实施血液采集管理程序,确保献血者安全和血液质量。
13.7 采血前应对献血者资料进行核查,确保从符合《献血者健康检查要求》的献血者中采集血液。
13.8 在采血前对血袋和血液保存液外观进行检查,以确保血袋无破损、无霉变,在有效期内;血液保存液外观符合要求。
13.9 应采用惟一的条形码标识献血记录、血袋(含原袋和转移袋)、标本管。应对贴标签过程进行严格控制,确保同一献血者的血袋、标本管、献血记录一一对应,贴签无误。
13.10 制定静脉穿刺和血液采集工作程序。严格采用无菌操作技术进行静脉穿刺。血液采集过程中必须将血液与抗凝剂充分混合均匀。血液采集量应采用称量方法加以控制,应符合《全血及成分血质量要求》的规定范围。
13.11 采血结束时,再次核查献血者身份、血袋、血液标本和相关记录,确保准确无误。
13.12 建立和实施血液标本留取程序,保证标本应来源于相对应的血液。
13.13 建立和实施献血者服务规范,制定献血者接待和护理程序,履行献血前告知义务,遵循献血知情同意原则。对献血者献血前、献血中和献血后进行全程护理和情感交流。
13.14 应建立和实施献血不良反应的预防和处理程序,包括献血不良反应的预防、观察、处理、记录、报告、评价和随访,以正确处理和减少献血不良反应。
13.15 建立并持续完善献血者跟踪和回访服务制度,实施献血者满意度调查程序、献血者投诉、反馈处理程序,确保献血服务的持续改进。
13.16 献血记录至少应包括献血者的个人资料、健康征询结果及献血者和征询者签名、健康体检结果及检查者签名、献血日期、献血量、献血反应及其处理和员工签名。
13.17 血液成分献血者应满足《献血者健康检查要求》以及相关的特定要求。
13.18 血液成分单采工作必须由接受培训的医学专业技术人员担任,应有接受过培训的医护人员负责监护。血细胞分离机应得到维护和监控,确保安全有效。必须使用符合国家食品药品监督管理局批准注册的一次性血液成分分离管路。应按程序安全弃置及销毁所有用过的一次性成分分离管路,杜绝非法复用。
13.19 应记录血液成分献血者的健康检查结果以及血液成分单采过程的关键指标,包括采集时间、品种、体外循环的血量、抗凝剂的使用量、交换溶液的量、血液成分的质量以及献血者的状态等。
14. 血液检测
14.1 开展血液检测业务的血站,血液检测实验室必须获得《血站实验室质量管理规范》审核合格证书。
14.2 没有开展血液检测业务的血站,应建立和实施血液标本采集、运输和交接程序,保证血液标本正确采集、运输和交接,并保存血液标本运送全程温度监控及交接记录;应建立和实施检测报告的接收和利用程序,保证正确接收和利用检验报告。
14.3 血站质控实验室应遵守《血站实验室质量管理规范》的相关要求。
15. 血液制备
15.1 建立和执行血液制备的质量体系,确保血液安全有效。
15.2 制备的血液必须符合《全血和成分血质量要求》。
15.3 应建立和执行血液制备、贴签、包装、入库程序。
15.4 血液制备环境应当整洁卫生,定期有效消毒,进行环境温度控制,保证血液的安全性和有效性。
15.5 血液制备应尽可能在密闭系统中进行。如果只能在开放系统进行制备的,则应严格控制,避免微生物的污染。
15.6 对血液制备的关键设备应按规定进行维护和校准,确保运行可靠和稳定。
15.7 血液制备的程序和方法必须经过审核确认。
15.8 血液制备过程中所使用的一次性塑料血袋的质量及其生产商的资质应符合相关法规的要求;一次性使用塑料血袋须经过质控部门确认合格后方可投入使用。
15.9 在整个制备过程中,所有血液及其包装均应正确标识。使用联袋时,在原袋和转移袋分离之前应检查每个血袋上献血条码的一致性。对血液进行过滤、汇集、分装或者冰冻等操作而需要采用非一体性的血袋时,必须保证在每一个血袋贴上正确的献血条码。对合格血液进行贴签时,应对标签中的信息再次进行核对。
15.10 建立和执行血液常规抽检程序,并对抽检结果进行统计分析和偏差调查,并采取纠正措施和预防措施。
15.11 每袋血液在其制备的每一个环节都应经过严格的目视检查,对于血袋有渗漏、损坏和缺陷迹象,疑似细菌污染或其它异常的血液,必须实施标识、隔离和进一步处理。
15.12 血液制备记录应确保对血液制备过程的人员、设备、血液来源和原材料、方法步骤、环境条件等相关信息的追溯,至少包括:血液的交接,成分制备过程,成分的常规抽检及质量结果分析,仪器使用、维护校准,成分制备环境控制,医疗废弃物的处理等。记录应有操作执行人员的签名。
16. 血液隔离与放行
16.1建立和实施血液的隔离程序,将待检测(包括可能存在质量问题但尚未最后判定的)的血液和不合格血液进行物理隔离和管理,防止不合格血液的误发放。
16.2 建立和实施合格血液的放行程序,并遵从以下原则:
16.2.1明确规定血液放行的职责,放行人员应经过培训和考核合格,并经过授权,才能承担放行工作,质量管理人员应该监控血液的放行。
16.2.2清查每批血液中的所有不合格血液,准确无误并安全转移处置后,才能放行合格血液。
16.2.3确定每批血液中所有制备的合格血液,并贴上合格血液标签,经过批准放行后,才能从隔离库转移到供临床发放的合格血液储存库。
16.2.4对每批血液的放行进行记录。保证所有的血液成分得到识别和清点核实;所有不合格的血液经过清点核实,并已被安全转移和处置。所有合格血液均符合国家标准。放行人应签署姓名、放行日期和时间。
17. 血液保存、发放与运输
17.1 建立和实施血液保存管理程序,并满足以下要求:
17.1.1血液的保存地点应具有防火、防盗和防鼠等措施,未经授权人员不得进入。
17.1.2 血液的保存设备应运行可靠,温度均衡,有温度记录装置和报警装置。
17.1.3对保存状态进行监控,包括持续的温度及其它保存条件的监测和记录,确保血液始终在正确的条件下保存。
17.1.4 根据储存要求将不同品种和不同血型的血液分开存放,并有明显标识。
17.2 建立和实施血液发放程序。应遵循先进先出的原则。在发放前应检查血液外观,外观异常的血液不得发放。应建立和保存血液发放记录。
17.3 建立和实施血液运输的管理程序,确保血液在完整的冷链中运输,使血液从采集直至发放到医院的整个过程中始终处于所要求的温度范围内。应对血液在整个运输过程中的储存温度进行监控。应建立和保存血液运输记录。
17.4 不同保存条件以及发往不同目的地的血液应分别装箱,并附装箱清单。血液运输箱应有标识,标明血液种类、运输目的地。
18. 血液库存管理
18.1 建立和实施血液库存管理程序,既保证有充足的血液供应,又能最大限度控制血液的过期报废。应根据临床需求确定不同种类血液的最低库存水平,处于制备过程中的血液应纳入库存管理。应对血液库存定期盘点。
18.2 应制定切实可行的血液应急预案,保证突发事件的血液供应。
19. 血液收回
19.1 应建立和实施血液收回程序,确定需要收回的血液、收回责任人及其职责,确保在任何时间有专人接听及处理血液质量投诉和缺陷发现,并能够快速收回已发放的血液或追踪血液去向,及时通告有关单位采取适当的措施。
19.2 在收回具有严重质量缺陷的血液时,应进行全面调查。血液收回记录应当包括缺陷血液的收回、追踪、分析、评审和处置,以及采取的纠正和预防措施。
20. 投诉与输血不良反应报告
20.1 应建立和实施血液质量投诉的处理程序,指定质控实验室和质管部人员负责。对血液质量投诉和与血站相关的输血不良反应报告,进行调查处理并详细记录。接到血液质量出现重大问题的投诉时,及时向当地卫生行政管理部门报告。
❺ 临床血液细胞学分析标本采集中应注意的问题
临床血液细胞学分析标本采集中应注意的问题
研究表明,检验前阶段占检验全程的 57.3 %,此阶段是整个质控中最易忽视却非常重要的环节。下面是我为大家带来的临床血液细胞学分析标本采集中应注意的问题,欢迎阅读。
一、从一例医疗纠纷看实验室和临床加强沟通的重要性
一天医院通知检验科领导到医务科一趟,说有病人把检验科告了,要求赔偿。情况是这样的,某矿务局一领导到我院体检,根据血常规化 验结果全血细胞减少被怀疑再障,据此到血液科做了骨穿检查,结果报告一切正常!这是怎么回事呢?病人不相信就到门诊重新做了 一次血常规化验,结果正常!这下病人不干了。前后往返几趟,耽误事儿不说,这精神上的压力如何让人能够接受?那么问题出在哪 里呢?我们和领导去了以后一看化验单上的直方图就明白了。原来是血凝了,而我们实验室也未把关,体检科和血液科也没有详细询 问病情和做必要的体检就让病人去做了骨穿,最终导致了纠纷的发生。责任很明确我们只好赔礼道歉,赔偿诊疗费用和路费,取得了 病人的谅解。
启示
1、假如实猜郑验室把关严格一点,及时发现标本凝固,复检措施严格一些,这种错误是完全可以避免 的。其实从中反应了我们的工作态度至少是不负责任的。医疗工作中的任何疏忽都可能导致错误的发生。
2、临床检验多由医生申请而进行,但检验新技术的不断涌现,有些是临床医生和护理人员不了解和熟悉的,需要我们检验人员去宣传和解释。我们曾做过一个 调查,对目前早已普及的血液细胞分析仪报告单上除 WBC 、 RBC 、 Hb 、 BPC 四相基本数据外的其他指标和警示信号,临床医师能够正确全面了解的不足 20 %。不 了解这些项目就谈不上正确选择和利用,思维和认识仍停留在原来对血常规的水平上,使这些项目失去了应有的价值也在某种程度上增加了患者的负担。全面的 质量控制不能单靠检验科,因为有些因素是我们所不能掌握和控制的,如临床用药情况,病人的生理病理状态等。只有让全体医护人员都重视才能完成。我们的 体会是有条件的可以安排医护人员到检验科轮转,熟悉检验流程,使实验室和临床能够正常的沟通。
二、临床常见标本不合格原因及对策
据统计血液细胞分析仪标本不合格在临床约占 4.54 %。标本不合格导致的直接危害是:标本不合格-报 告错误-误导医生诊断-延误最佳治疗时间-病人投诉-医疗纠纷。常见原因如下:
1、抽血方法错误,抽血不顺利,技术不过关
对策:
a、尽可能静脉采血,必要时可用末梢血,如婴幼儿、大面积烧伤病人及某些需经常采血的病例 如白血穗圆颂病、肿瘤放化疗病人等,并注明血液类型,以便对比观察。
b、禁止便输液便采血,特别是避免 从输液的同侧。
2、抗凝剂错误,混匀不充分或比例不当
这种情况比较常见。目前多用 EDTA2K ,正确浓度为 1.5mg/ml 血腔郑。通常将其配成 15g/L ,每管加 0.1ml ,相当于 1.5mg ,可抗凝 1ml 血。 100 ℃干烤不影响抗凝能力。
因抗凝剂比例不当可导致两种情况: a. 抗凝剂过剩:达 2.5mg/ml 血时,可致血细胞肿胀,影响计数和分类。 b. 抗凝剂不足:可致血液凝固或出现微血块,阻塞管道,计数 错误。建议选择真空抗凝管。因为有明显的颜色标志,方便选用,还可有效避免因注射器推注导致的标本溶血。
3、疾病因素
a、对血小板计数的影响:
( 1 )血小板聚集:
因有些疾病可致血液处于高粘状态使血小板易于聚集。统计发生率顺序为:糖尿病>肾病>血液病>心血管疾病。凝集 的血小板体积较大,且不被溶血剂溶解,从而导致假性的白细胞增加,血小板减低。对此类疾病要注意观察直方图(在白细胞直方图与 Y 轴可见一个高的截距,提 示在 35fl 左右由干扰,血小板直方图也不正常),以判断标本采集是否满意。有时这种情况还可能因 EDTA 抗凝剂的诱导使血小板聚集导致假性血小板减少 (EDTA PTCP ) , 这种情况多见于肿瘤、心脏病、肝病患者。我们体会这种情况在用末梢血稀释标本较常见。和真正的血小板减低症鉴别方法为:在 EDTAPTCP 时 MPV 值正 常。采集标本后应至少在 15 分钟后进行测定。虽然这种情况较少见,但有时血小板减少对临床似乎更有价值。此时要注意观察涂片,查看有无血小板聚集。也可 以换用枸橼酸盐抗凝剂采血。必要时复查。
( 2 )小红细胞及破碎红细胞:
临床常见严重的缺铁贫和溶贫时可对血小板计数造成干扰。对于前者在较好的仪器可通 过浮动界标、拟合曲线等技术得以校正(这一点也是购置仪器时要考虑的重要因素)。后者可通过观察直方图进行判断。
b、对白细胞计数的影响:
( 1 )红细胞不溶解:某些新生儿、肝病患者红细胞膜脂类异常或由于低色素性贫血以及红细胞内含由大量的 sHb 、 HbCO 等原因可有低抗溶血剂的作用,使红细胞溶解不全,致白细胞假性增加,直方图异常。此时可加大溶血剂量,或人工计 数。
( 2 )冷球蛋白血症:在多发性骨髓瘤、巨球蛋白血症、淋巴系统增值性疾病、转移瘤、自身免疫病、感染等疾病的患者血中含有 冷球蛋白,在骨髓瘤、白血病、妊娠、血栓、糖尿病等患者血中含有冷纤维蛋白,均可使血中的不定形物质凝集,导致白细胞计数增 高,直方图异常。此时可将标本置 37 ℃预热后立即检测。
c、对红细胞系统的影响:
( 1 )冷凝集综合症:可使红细胞在室温下凝集,在病毒性或支原体性肺炎、 肝硬化、雷诺氏病、疟疾等患者常见。
( 2 )白细胞计数显着增高:慢粒及一些急性白血病时大量的 白细胞可使红细胞计数及血红蛋白测定假性增高。
( 3 )高脂血症:可使血红蛋白假性增高,进而使 MCH 、 MCHC 异常。
4、抽血及编号错误
a、我们在病房每年都发现数例采错血的情况,未发现的也可能存在。有时甚至很细心也可能出错。如有 一次到口腔科采血时,病人有事出去了,而陪护在病床上坐着,喊病人的名字他竟然也答应,说让他 抽血竟也没有拒绝。后来医生打电话说怀疑结果不对,原来病人血小板一直减少,为何突然正常了? 重新到病房抽血才发现根本不是一个人。想起来后果可怕。
b、通常大医院都是由病房护士抽好血后把标本和化验单卷在一起送到实验室,然后重新抖开编号。这中间既可能污染、弄破化验单,又极可能编错号。一旦发生就往往导致至少两个以上病人结果失真。
c、门诊采血也偶有发生错误的。值得重视的是冒名顶替的情况。目前社会上造假情况很多,临床造假报 告的用途更是五花八门。其中 “ 善意 ” 者往往涉及费用报销问题。而恶意者则出于其它目的,甚至欺 诈。我们要高度警惕。建议建立采血查验证件制度,以防恶意冒名者。对自带标本要在检验报告上加 盖 “ 自带标本 ” 字样加以注明。
5、标本溶血
导致标本溶血的常见原因:注射器采血时穿刺不顺、从血肿处采血、用力将血推入试管、混匀时用力过 大或产生气泡、穿刺处酒精未干即开始采血、止血带捆扎时间过长或让病人反复攥拳以使血管明显 等。
建议:
( 1 )已发生溶血的标本不能使用。因为 严重的溶血可使 Hct 减低, Hb 相对增加, MCV 正 常而 MCH 、 MCHC 增高。可导致错误诊断。此时 要通知临床并建议重新采血,如不能重新采 血,应在检验报告中注明 “ 标本溶血 ” 以及可能对 结果的影响。
( 2 )为避免溶血应规范采血步 骤,改正易造成溶血的不良习惯。
( 3 )推荐使 用真空采血系统。
三、采血时的接诊艺术
我们常说医院工作要以病人为中心。实际上现在病人的要求越 来越多元化了,很多时候你的技术好,但是服务不到位同样不 能被患者认同。曾有人动情的描述过医疗机构的标志: 4 棵红心 托起白十字。白色代表病人的苍白无力,显示了在身心上的痛 苦和无助。 4 颗红心代表医务人员的爱心、耐心、细心和责任 心。有一 点为大家所共识,那就是要在人性化服务上作文章。检验人员 和患者接触交流的主要环节是在标本采集阶段。此时还应注意 接诊艺术,把我们的服务做得更好,同时也可让病人在融洽的 气氛中保持最佳的生理状态。
正确的血液采集方法
采集步骤:
查看检验单,询问病史,查对检验单上病人姓 名、性别、年龄等项目与病人是否吻合,耐心 检查需要空腹血检验项目要询问病人是否 8 小时 以内没有能量摄入,询问病人在检验前是否有 足够的休息;需要增添项目时先与出具检验申 请单的医生联系请患者准备。( “ 请将左手衣袖挽起,手伸直平放,拳头握紧。 ” )对孩子应多哄劝,避免剧烈躁动、哭 闹。对于紧张或有晕血史的`病人要进行安慰( “ 您可以侧过身去,不看很快会好 ” )。
采血器材准备:选择相应的真空采血管;并记录采集时间。
选择穿刺血管:扎好压脉带,观察血管走向,选择穿刺点,松开压脉带(压脉带压迫时间不能超过 1 分 钟),正在输液的病人绝对不可同侧采血,更不可以利用原有的输液针头采血。
消毒:以穿刺点为圆心,用蘸有碘伏的棉签由 内到外螺旋型涂抹,消毒范围为直径大约 3 厘 米,注意消毒过的地方不能重复涂抹,在涂抹 的过程中棉签必须也要同时旋转。
采样及混匀:等待碘伏干了以后(必须等到干了以 后,否则达不到消毒效果),再次扎好压脉带,将针 头平面朝上与手臂成 15 °穿刺,最好一针见血。拔出 采血管后立即进行颠倒 8 次混匀。在抽学时要询问病人 感受(如有无心慌,头晕等情况),当出现异常时如:· 病人出汗、面色苍白、晕倒时立即拔出针并急救 · 操作失败,取得病人谅解,再次进行操作( “ 对不 起,由于 …… 的原因需要再取一次血,请原谅 ” )。采样尽量在 1 分钟内完成。
止血:采血结束后,解开压脉带,退针后请病 人 “ 手指压住棉球,手伸直抬高于心脏,保持两分钟 ” (如果是有出血倾向患者如紫癜, ITP , 血液病等要压迫 5 ~ 10 分钟直到无血渗出)。
标本前处理:将采血管与相应的检验单裹好, 分类,尽快送检。
检验项目所对应的采血管:
1. 血糖及糖耐量试验 黄头管
2. 生化检验 绿头管
3.PT 、 APTT 、 FIB 、凝血因子 蓝头管
4. 血常规 紫头管
5. 血沉 黑头管
6. 血清学试验 红头管
采血时的接诊艺术
1、当采血失败需再次操作时要真诚的说 “ 对不 起,由于 …… 的原因需再抽一次,请原谅! ” 以 取得病人的配合。
2、因各级医院条件不同,切不可当着病人的面 说别家医院化验不准,特别是对下级医院更要 尊重和理解,以免对下级医院造成伤害和误解。
3、要尊重病人的隐私。当核对病人时不可当众问 “ 你得的是××病吗? ” 特别是面对肿瘤和传染病患者时 更要慎言。如有报道某护士到病房抽血时无意间告诉实习学生说 “ 这个病人得的是艾滋病,抽血时要 小心点 ”,病人并不知自己的病情,当听到后经受不了打击跳楼自杀。
执业《医师法》第 22 条第 32 项规定: “ 医生应当关心、爱护、尊重患者,保护患者的隐私 ” ,不尊重患者的合法权益就 是违法,就可能砸医院的牌子和声誉。有时在体贴和尊重病人这个问题上我们缺少的不是高昂的设备。有时无意间 对患者精神上的伤害往往比肉体上的更严重和持久。我们必须以人格为基石,服务意思中必须于公众日趋高涨的维 权意识相适应。用我们的真情和爱心为患者服务 , “ 让病人满意而归 ” 不再是一句空话。
4、对弱势群体如农村和低收入者更要耐心解 释,热情相待。一则笑话:医生让一位疑得了 糖尿病的老大爷到化验室 验 尿,病人问: “ 咽 ( 验 ) 尿干啥哩? ” 工作人员解释说就是看看尿里 有没有糖。结果等了老半天病人才回来,慢腾 腾的说: “ 大夫,我咽了一大口尿,里面没有 糖! ” 幸亏没有让病人验粪便!
四、采血过程的安全问题
1、采血意外的预防:
据报道某年冬天某县医院一护士给患儿抽血后忘记解止带 , 导致患儿上肢坏死截 肢的恶性事故。人命关天,警钟常鸣。我们日常工作中要树立 “ 医疗无小事 ” 的观念,尽心、尽职、尽 责,养成良好的工作习惯 , 及时发现问题,以防差错事故的发生。
如当婴幼儿因恐惧哭闹时,可用语言转移注意力,并一定要注意患儿口中有无糖和瓜子等异物,以防吸 入气管造成窒息;抽血前不要反复抽拉针芯防治污染针头,动作不可太猛以防把针头崩出去伤人;采 完血后嘱病人压好棉球并抬高胳膊高于心脏防治血肿,对有出血倾向者要延长压迫时间,直到无渗血 为止。
2、采血时感染的预防:
采血时对工作人员威胁最大的是被污染的针头意外刺伤。据调查大部分临床医护人员都 有此经历。研究报告医务人员通过污染 HIV 、 HBV 、 HCV 针头刺破皮肤被感染的风险分别为 0.30.5 %、 240 %、 3 10 %。据报道我国正处于艾滋病高发期,目前发病率居亚洲第二,世界的 14 位,其实我省情况更为严重。说 “ 艾滋 病就在身边 ” 并不夸张。
实验室人员无疑是意外刺伤发生的高危人群 , 其实发生意外 “ 暴露 ” 后所造成的诸如焦虑、绝望、恐惧等心 理伤害更严重。故要引起我们的高度重视。一方面要学习有关院内感染防治知识,思想上重视,工作 中落实,把每一次的操作对象都当作具潜在生物感染的危险,切不可麻痹大意。每一次静脉抽血后严 禁用手直接去针头或回套针套,并及时按要求存放和销毁。
3. 晕血症问题:
临床常见个别病人抽血时突然晕倒的情况,多半是由 “ 晕血症 ” (又称血液恐怖症)引起。病人大多从小怕见血,有 时听到、看到血既刻晕倒。是一种特殊处境中的精神障碍。此症和怕见蛇、毛毛虫的 “ 物体恐怖 ” ,以及怕见陌生人、怕见异性的 “ 交际 恐怖 ” 同属恐怖症,于胆小无必然联系。和晕车、晕船也不同,和恐高症相似,是心理问题。除了不能见血外与常人无异。此症轻者见 血就感到恐怖、恶心,重者会失去知觉。与此类患者要防止病人摔伤。但此症并非不治之症,经 “ 脱敏 ” (即在心理医生指导下反复、逐 步的由弱到强的见血)即可治愈。
;❻ 养猪场如何做好生物安全
猪场做好生物安全的17个关键要点!
防疫一线
2018-01-25
关注
集约化种猪场的生物安全体系是通过各种手段以排除疫病威胁、保护猪群健康、保证猪场正常生产发展、发挥最大生产优势的方法集合体系的总称。一个严格、全面、系统的内防外控的生物安全体系的建立对于养猪生产尤为重要。
01
引种
初次引种,在选择供应单位时,尽可能减少供应单位数量,尽量做到种源引种供应单位的单—性;同时需考察种猪健康水平,有必要要求供应商提供血清检测报告及其健康历史。要让本场兽医与对方兽医沟通讨论,商定一套适宜的隔离与本土驯化计划,确定隔离期、检测与免疫接种需要。
02
隔离舍
规划设计
在猪场设计中,隔离区最好坐落在生产区的边界之外。隔离舍与大群之间的理想距离是4.8公里,但至少要达到400米。从布局上应考虑主流风向和表水径流,确保不会将污染从隔离设施带到大群。
管理
场区内基础设施设备和建设要符合管理要求,生产工作须科学化、养殖记录要规范化,区内的猪群要有可追溯标识。按照全进全出模式运营,所有引进种猪都应与大群隔离不少于八周,其中四周完全隔离,在第四周时由兽医对猪进行采血检测,检测结果出来之前任何动物都不得从隔离舍转出。
03
生产流程
各单位应采用全进/全出生产系统,以降低饲养环境中的病原水平。当病原水平高的时候,这种系统能够降低发病风险。而且,还能防止疾病从高日龄猪只传给小日龄猪只,从而改进猪场的健康状态和生长速率。
04
猪舍布局
在中国养猪建设过程中,根据规模大小,可分为一点式、两点式、三点式或多点式布局。较小规模的猪场可根据土地面积大小设计一点式,这样管理比较方便;大规模的猪场(如超过2400头母猪的猪场),可根据管理要求设计两点式或三点式,每个区域布局可根据主风向把保育区放在上方向,其他饲养区域可布局在下风向。
05
封闭猪群与扩繁
封闭猪群是生物安全的关键要点之一,可以将疾病入侵的风险降至最低,保障舍外环境对猪只的影响,有利于舍内小环境的调节,给猪只提供舒适的环境要求,有助于猪群内部健康状态的稳定。
06
环境控制
当前建设的猪场均为密闭性猪舍,因此猪舍内部的环境对猪群的健康和生物安全有着重要影响,在猪舍的环境系统设计上,猪舍环境控制系统是一个整体,应当根据猪只的生活习性和对环境的要求综合考虑栏体设计、地板设计、空间设计、排污设计、房舍结构等一系列因素。从而确保猪舍空气的良好,给不同阶段的猪群提供最佳适宜的温度。
07
供料方式
料塔是生物安全中最容易忽视的地方。因此在猪场供料方式设计上尽可能将料塔设计在场外靠近猪舍的地方,饲料运输车不进入猪场。同时定期清空、清扫料塔,确保料塔保持密闭、干燥。建议:有条件的猪场可以采用集中供料的输料模式,从供料环节减少生物安全隐患。
08
消毒
生物安全措施应着重考虑设施和设备的卫生。应当系统地对猪场进行消毒,包括:猪群内正在使用的设备的清洗消毒、场内使用的车辆的清洗消毒和人员进出猪舍的消毒等。消毒过程包括:喷雾消毒、清洗(人员需要洗澡),再用合适的、高效的消毒剂按照标签说明进行消毒。
09
人员
尽管最容易传播疾病的方式是猪只的转群,但通过猪场人员造成的疾病引入的风险也很常见。要想降低经人员引入疾病的风险,必须对猪场员工进行系统生物安全的培训并严格要求,从人员角度最大限度确保生物安全。
10
出猪台设施
在猪场的生物安全体系中,出猪台设施是仅次于场址的重要的生物安全设施,也是直接与外界接触交叉的敏感区域,因此,建议建造出猪台时需:
划分明确的出猪台净区和脏区;
出猪台的设计应保证冲洗污水不能回流猪舍;
建造防鸟网和防鼠措施:
保证出猪台每次使用后能够及时彻底冲洗消毒;
出猪台应设计在猪场下风向或距离生产区更远的区域。
内部生物安全的目标是控制猪场已有疾病的扩散,尽可能降低这些疾病的发病率,外部生物安全的目标是维持猪群良好的健康水平,避免新的病原侵入猪群。以下将详细解读猪场外部生物安全措施。
猪场外部生物安全措施
11
访客进出
建立来访预约及登记制度,确保访客理解并遵守猪场的生物安全守则;
设置工作人员和访客的进出口及通道标识,避免交叉、重叠;
访客需按规定沐浴消毒甚至隔离后才能进入场区及猪舍,除非必须,访客不应进入猪栏、转猪走道,或触摸猪只;
访客个人物品不得带入猪舍,所带的测量记录仪等应经过彻底清洗和消毒,猪场应适当备置这类物品,尽量避免使用其它猪场用过的设备;
为投递人员设置投递点,避免设在场内人员穿行的区域,确保邮件、养猪设备、饲料、药品、精液等外来物品的安全。
12
车辆进出
来访车辆尽可能不进入场区边界,可在场外设停车场;不允许载猪(包括活猪和死猪)车辆进场;只允许本场车辆和机械进入场区,在入口设置消毒池,进场车辆需严格消毒,尤其注意清除带有蓝耳病等疫病风险的粪便;
制定一项“无归”政策,任何猪只一旦越过了某个特定边界,如只要踏上了卡车车厢,就不能再返回猪场;
确定猪场的“脏路”(拖车、饲料、运输车辆、掉落家畜捡拾车、粪车)和“净路”(猪场和员工的车辆),“脏路”应远离猪舍;确保料车不需要一次为两家猪场送料,最好采用现代化的自动饲喂系统,实现场外供料;
确保运猪卡车到场前经清洗消毒,并充分干燥。任何情况下参与装猪的卡车司机都不得进入任何猪舍;除非绝对必须,否则猪场人员不应进入运猪车或接触车厢挡板,尤其是在卡车直接来自屠宰场的情况下。
13
猪场服装
场区边界处提供靴子消毒池,消毒前应先清除所有可见的粪污,要注意,雨水的稀释、错误的浓度、以及久不更换都会影响消毒液的效果;
为不同的猪舍配置不同的靴子和服装,避免猪舍间交叉使用,用后应清洗消毒,一次性物件用完都应弃置;
如场内员工不得不进入装猪卡车,那么他们重新进场之前必须彻底清洗消毒靴子,并更换全套服装。
14
猪只参展的生物安全
参展前确保参展猪只的健康状况及参展场所和运输车辆的安全;
避免互借设备,并确保猪栏、喂料器、饮水器等所有设备在使用前后的消毒和干燥;
减少参展猪只与人和动物的不必要接触;
做必要的兽医和兽药储备,以应对参展时出现的突发情况。
15
猪场外来动物控制
确保猪场围墙和建筑完好安全,防止野猪等动物进入;清理猪舍内外杂物,一经发现鼠迹马上解决;做好场内外清洁,减少苍蝇蚊虫的滋生;
清除猪舍周围的鸟巢,确保猪场设有防鸟装置,料槽加盖,及时清扫洒落饲料;
让猫狗等宠物远离猪场;工作人员家中如有猪以外的动物,到场工作时要求必须保障个人卫生,如家里有养猪,进场前不应接触,否则就相当于造访了另一家猪场,则24小时内不得接触场内猪只。
16
死猪处置
为员工列出一套清晰的处理转移死猪的例行规程;
死猪及妊娠产物应立即、正确、合法地处置,死猪应当焚烧或深埋,死猪处理地点应被视为高危地区;
最理想的炼油车的收集地点应位于场外,或在远离猪舍的地方,收集点的猪场方入口和收集者入口之间应有清晰分界,使用后需清洗消毒。
17
空气净化
除了在猪场选址及规划设计时考虑周边地理及生态环境,还可以为猪场设计安装空气过滤系统,尤其是公猪站、母猪场等对生物安全要求严格的原种猪场。外界空气通过多重空气过滤装置,能过滤掉99.5%以上的0.3μm微粒,能有效阻止猪蓝耳病、猪瘟、伪狂犬、□蹄疫、喘气病等原微生物感染,确保公猪站内公猪的健康,降低保育猪、育肥猪的死亡率,提升猪场效益。
❼ 如何进行实验室内的生物安全防护工作。
实验室生物安全防护的内容包括安全设备、个体防护装置和措施(一级防护),实验室的特殊设计和建设要求(二级防护),严格的管理制度和标准化的操作程序及规程。
应将每一特定实验室从立项、建设到使用维护的全过程中有关生物安全防护综合措施的内容编入各实验室的生物安全手册中。必须设有专职的生物安全负责人。
(7)如何开展采血生物安全扩展阅读:
实验室工作人员在处理病原微生物、含有病原微生物的实验材料或寄生虫时,为确保实验对象不对人和动物造成生物伤害。
确保周围环境不受其污染,在实验室和动物实验室的设计与建造、使用个体防护装置、严格遵守标准化的工作及操作程序和规程等方面所采取的综合防护措施。
❽ 规范的采血流程
采血应该怎么做才规范?以下是我为您整理的 ,希望对您有帮助。
规范的采血流程
一、 检验科采血人员上岗必须佩带好胸牌、帽子、口罩及手套、做好个人生物安全防护及无菌操作准备。
二、 热情接待每位患者,并掌握〝急诊优先〞的原则。 认真审对申请单,按照申请单查对患者的姓名、性别、年龄、科室、检验目的、检验项目。 根据检验项目准备采血管并在采血管上标记病人信息。 准备采血
1、 用0.5‰消毒灵液浸泡手(戴手套的手)或用湿手帕擦手(戴手套的手),做到一针
(一次性针头)、一管(一人一管)、一带(一人一根压脉带)、一张(一人一张纸)。
3、 使用一次性真空负压采血器之前检查包装是否完整,负压管是否破损。 患者取坐位,手臂伸直,平放在采血台上,暴露穿刺部位,距采血部位5厘米处绑上止
血带,止血带要松紧适宜,约在收缩压与舒张压之间森做尺,同事嘱患者紧握拳头,若此时静脉扔不易见,可嘱患者反复握拳数次,使静脉易于怒张,止血带捆绑时间不易过长,否则影响检验结果的准确性。
4、 穿刺前须询问胡扰患者有无碘过敏史,有碘过敏史需用75%消毒。 打开一次性真空负压采血针,用左手固定患者前臂,拇指按住静脉穿刺部位的下端,使
之固定。右手持采血针,针头斜面向上,先以约30度的角度穿刺静脉前2-3毫米处的皮肤,然后再穿刺静脉壁而进入静脉腔,待见有回血后,将针头顺势而进入少许,以防止采血时针头滑出静脉,但不可太深,以免刺穿静脉。
5、 将一次性真空负压采血针的另一端插入带有病人信息的真空负压管内,待抽至所需血量
后,先放松止血带,嘱患者拳头放松,再以无菌棉签按住伤口,拔出针头(抗凝血真空管须立即颠倒混匀6次)。
6、 采血此高完毕后应嘱患者紧压伤口至止血5分钟(血液病患者应延长压迫止血时间)。每位
患者采血前应换纸,换止血带。
六、 静脉采血意外情况处理方法
1、 局部血肿:嘱患者压好穿刺针口,24小时后可热敷使其消散吸收(血液病患者除
外)。
2、 晕血:若采血未结束应立即停止采血,让患者平卧并解开衣领,大声呼叫患者苏醒,必
要时通知急诊科抢救处理。
静脉采血操作流程
操作者穿戴整齐:衣帽整洁,指甲已修剪,规范洗手。
备齐用物。报告:“报告评委XX号做静脉采血技术操作准备完毕,请指示”。
1. 操作者核对医嘱(操作前),大声说“三查、八对”。
2. 用物:治疗车上放手表、笔、手消毒剂、剪刀、标签、检验单、标本容器。治疗盘
内放一次性采血针两个、一次性手套、2%碘酒、75%酒精、棉签、一次性治疗巾里放止血带、小枕、胶布。
3. 操作者评估环境:“环境清洁安全,光线良好”。
(1) 携用物至病员旁,核对床头牌.
(2) 解释:“老师,你好!请问你叫什么名字,你今天感觉怎么样?我是你的责任
护士XX,能让我先看一下你的腕带吗?”操作者查对患者腕带。”因为你的血常规检查提示你的白细胞偏高,现要为你复查一个血常规,待会我给你采静脉血好吗?请问你想用哪只手采血?”
(3) “让我先检查一下你的血管好吗?”轻轻掀开被子,帮助病人解开衣袖,选择
合适的静脉血管,取小枕放于病人穿刺部位下,铺一次性治疗巾,放好止血带。查看局部血管、皮肤及肢体活动情况,有无炎症、瘢痕,静脉是否暴
露、是否有弹性。“病人全身情况无异常,局部情况良好,请稍等片刻,我去准备用物。”
4.清洁双手(用快速手消毒剂,六步洗手法)戴口罩(塑型)
5. 戴手套
6. 消毒皮肤:以进针点为中心,用2%碘酒消毒皮肤(8cmX8cm)待干(请你暂时不要移动这只手,以免污染好吗?),准备胶布。
7. 在穿刺部位上约6cm处扎止血带.“xx老师请握拳",用75%酒精脱碘两次
8. 进针前再次查对,选择采血针型号。进针:绷紧皮肤,针尖斜面向上.老师我要进针了,请不要紧张。以20度进针,刺入静脉,见回血后取胶布固定针柄,取标本试管连接采血针抽出适量血,松止血带,松拳,取干棉签一根置于穿刺部位,迅速拔出针头。嘱病人按压2-3min,取下治疗巾和小枕。
9. 协助病人整理衣袖,床单位并取舒适卧位。
10.取手套,洗手,取口罩。再次查对患者姓名,床号及标本。在检验单上签名并记录采血时间。
操作者将呼叫器置于患者方便使用的地方,向患者解释:”xx老师,你的静脉血我已经采集好了,请你密切观察穿刺部位的皮肤,如果有血肿或出血,请你立即按呼叫器通知我们医务人员,我也会随时来看你的,谢谢你的配合。”
11.整理用物
14.终末处理:一次性物品按医疗垃圾分类处理,需反复使用的物品置于1%o含氯制剂中浸泡30分钟后,清洗、晾干、备用。(报告评委XX号做静脉采血技术操作完毕请指示。)
注意事项:
1. 若患者正在进行静脉输液、输血,不宜在同侧手臂采血
2. 在采血过程中,应当避免导致溶血的因素
3. 需要抗凝的血标本,应将血液与抗凝剂混匀,轻轻转动防止血液凝固
4. 严格执行查对制度和无菌操作原则
5. 合血时,做到一人一针一管一单
6. 取血清标本时避免震荡,防止红细胞破裂造成溶血。
静脉抽血操作流程
注意事项
1、血管的选择:一般采用肘部静脉,手背静脉,内踝静脉,股静脉,小儿可采颈外静脉。
2、 采血后注入采血管的顺序:血培养管→血沉管→血凝管→血常规管→生采血量:全血或血浆检验标本时,需及时摇匀。如血培养、厌氧培养成化管。 人抽8-10ml(怀疑亚细时应≥10 ml),小儿抽1-3 ml,血常规抽0.5-1 ml,糖化血红蛋白、肌钙蛋白等用血常规管抽2 ml,凝血功能抽2-3 ml,血沉抽1.6 ml,生化类抽2 ml。
3、 试管的选择
① 紫色管:凡全血类,需及时摇匀。如血常规、肌钙蛋白、
糖化血红蛋白、网织红细胞、输血前常规、血型、交叉合血、BNP
都用紫色管。
④ 红色管(生化管):血清类都用红色管,如肝肾功能、血黑色管:血沉,需及时摇匀。 蓝色管(血凝管):血浆类用蓝色管,需及时摇匀。如凝糖、血脂、心肌酶、肝炎全套、甲功三项、风湿、免疫等。
血常规、D-二聚体、血浆纤维蛋白降解产物等。
领取。
4、 灰色管:葡萄糖耐量、胰岛素释放试验、血糖及餐后血糖都特殊类,像皮质醇要采两次血,8:00、16:00分别用红色血培养为专用培养瓶,打印条码后,叫外勤人员到实验室用灰色管。 管抽2 ml。 空腹血糖测定需空腹12小时后取静脉血,取血前避免剧烈运动,取血时需摇匀的采血管不可过分震荡,顺倒摇匀8-10下即可,以免溶血。 严禁在输血、输液处取血标本,最好在对侧肢体采集。 若取静脉血时,应避免压迫颈静脉窦,并应随时观察患者的面色、呼间最好在早晨或上午。 吸、心率,凡病情危重、心肺功能不全患者,不宜在颈静脉采血。
5、需要空腹抽血的有:肝功能+肝病酶学、血脂+冠心病风险因子、空腹血糖(胰岛素)、甲功三项、C12等。
风湿、免疫实验室一般只有每天上午10点前接收标本。