‘壹’ bl420e生物技能学实验系统做家兔失血性休克时应选中哪一个实验选项
家兔失血性休克
【实验目的】
1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型； 2、观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变； 3、了解失血性休克的治疗，探讨失血性休克的发病机理及救治措施。
【实验原理】
休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。
【实验对象】
家兔
【实验器材】
BL-420生物机能实验系统 手术器械、输液装置、尿量测定装置、量筒、注射器、针头、20%乌拉坦、1%肝素、1%NA、生理盐水。
【观察指标】
动脉血压（BP） mmHg 中心静脉压（CVP） cmH2O 呼吸（R） 频率、幅度 尿量（U） ml/10min
【实验步骤】
1、 称重麻醉:（乌拉坦5ml/kg）;
2、 固定备皮: 仰卧固定，颈部和腹部剪毛备皮;
3、 血管分离: 颈部正中切口，分离右侧颈外V和左侧颈总A ，穿双线备用; 4、 荷包缝合: 切口部位：下腹部耻骨联合上方3-5cm内，正中切口; 5、 肝素抗凝:（耳缘V,1ml/kg）排净空气，尽量靠近远心端，回抽有血;了 6、 血管插管: 结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同;
7、 呼吸装置: 胸腹部正中皮肤呼吸最明显处，穿单线固定，并连于张力传感器; 8、 0.01%AD（0.2ml） 第一次记录 9、 复制休克（40mmHg,30min） 第二次记录 10、注射NA（耳缘注射,1ml/kg） 第三次记录 11、静脉补液（40～60滴/分） 第四次记录
【注意事项】
1、麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛，可致神经源性休克；过深则抑制呼吸。 2、牵拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。
3、动、静脉导管，事先用肝素充盈，排除空气。导管插入后，再推入少量的肝素抗凝，防止导管前端堵塞；静脉导管插入后可缓慢滴注生理盐水保持管道通畅。放血后也应及时往动脉导管内推注肝素。
4、血管插管时，结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同：颈外V：先夹闭近心端，后结扎远心端，插入4-5cm；颈总A：先结扎远心端，后夹闭近心端，插入2-4cm。剪口部位尽量靠近远心端，成45度角朝向近心端剪开小口，约为管径的1/3-2/3，插管方向朝向近心端。
5、输液时应注意三通管的使用，输液装置只能单向与静脉导管相通，不能在输液的同时测中心静脉压。要观察中心静脉压时，需关闭输液通道，使换能器与静脉导管单向相通。
6、第一次实验记录：动物稳定10min后，记录正常状态下；
7、第二次实验记录：颈总A插管的三通开关处断续放血， 血压维持于40mmHg 左右20-30min，建立失血性休克模型。每放血10ml即关闭开关，监测BP变化；血压维持于40mmHg时， 观察并记录上述指标变化（重点记录BP上升的最高值及变化时间）。
8、第三次实验记录：休克动物的抢救措施一：耳缘V缓注1% NA（1ml/kg），观察并记录上述指标变化（重点记录BP上升的最高值及变化时间）
9、第四次实验记录：休克动物的抢救二：静脉输入生理盐水，输液速度---40-60滴/分，输液总量---约为失血量的2-3倍，每输液50ml即观察并记录各项指标的变化。
【实验记录】
结果一：
结果二：
【理想结果】
【注】实验并没有很成功：其中没有进行抢救措施一，所以注射NA后的变化没有记录；抢
救措施二中的生理盐水错误地沿着耳缘静脉输入了，BP,CVP变化不明
‘贰’ BL-420如何实现多通道的同步记录
生物机能实验系统生成的，就用生物机能实验系统打开埃
‘叁’ 机能实验中刺激电极,刺激电极,记录电极的作用
微电极阵列MEA记录系统是在直径约5mm的微区玻璃表面点阵状排列8x8（6x10)个TiN材料电极， 电极直径最小10um，电极间距最小30um，离体组织、细胞或者切片直接紧密地置于MEAs上，可以同步记录60个位点的细胞外场电位信号，电极即可记录也可用作刺激或者接地，适用于神经、视网膜和心肌细胞电生理特性和离子通道生物学特性研究。
由此可见，其特点即在于
1、无创性微电极细胞外记录技术
2、所有电极即可记录、接地也可用作刺激
3、细胞可直接放在MEAs上长时间培养和记录
4、MEAs置于放大器腔体内，最大限度降低电噪音
5、MEAs材料透明，将电生理记录和形态学观察同步结合。
可以通过仪器更直接观看、实验在细胞上等，因此在生物医学上十分有用，是现代科技技术的体现
它的功能主要有：1、信号放大和滤波
2、信号采集、记录和分析
3、温度控制器：精确控温达0.1℃
‘肆’ bl—420的工作原理
L-420生物机能实验系统的基本原理是：
首先将原始的生物机能信号，
包括生物电信号和通过传感器、
引入的生物非电信号进行放大
有些生物电信号非常微弱，
比如减压神经放电，
其信号为微伏级信号，
如果不进行信号的前置放大，
根本无法观察
‘伍’ WINDOWS7如何安装BL-420F
首先推荐不要选择ghost版的，因为Ghost版的兼容性不好，使用安装版（推荐微软官方版本的）较好。首先要准备一张Win7的安装盘，打开光盘目录下的setup.exe，然后点击现在安装，稍等一下就会出现安装界面，然后点击带有＂不安装更新＂的选择，然后点下一步，如果你的电脑想将原来的系统升级到Win7，那么就选升级，如果想直接安装Win7的话就点安装，然后点击下一步，点击安装的话，就要选择安装的分区，这个你可以自己选择。 这样Win7就开始安装 这个设置你可以自己设置。 上述的方法需要电脑进入系统后才能使用这个方法。 方法二：电脑开机前将光盘放进电脑光驱，然后按键盘上的任意一个键进入安装界面，然后选择现在安装，接下来的操作与上方法一差不多，在下面不作详细解释。
‘陆’ BL-420中图标代表什么含义
BL-420生物机能实验系统有很多图标的哦，不同的图标表示不同的含义，楼主的问题太笼统啦
这些图标是做标记的系统设置里面的，是实用的系统的标记。
生物信号采集系统（亦称为生物机能实验系统）是指这样一种系统：研究人员、老师和学生可以通过该系统观察到各种生物机体内或离体器官中探测到的生物电信号以及张力、压力、温度等生物非电信号的波形，从而对生物肌体在不同的生理或药理实验条件下所发生的机能变化加以记录与分析。生物机能实验系统是研究生物机能活动的主要设备和手段之一。
‘柒’ 使用BL-420生物机能实验系统时,下列哪些有消除干扰的作用 A 增益 B 滤波 C 时
BL-420生物功能实验系统的基本原理是首先放大原始的生物功能信号，包括通过传感器引入的生物电信号和生物技术信号（有些生物信号非常微弱，如减压神经放电，信号是微电压信号，而如果信号的预放大不放大，就没有观察到）、滤波（由于生物信号中夹杂有许多声、光、电干扰信号，如50赫兹的电网信号，这些干扰信号的幅度往往大于生物电信号本身的强度。如果这些干扰信号没有被滤除，那么有用的生物功能信号本身就无法被观察到，因为过多的干扰信号本身无法被观察到，然后通过模数转换对信号进行数字处理，并将数字生物功能信号传输到计算机内部，计算机通过专用的生物能量实验系统软件，接收生物信号放大后的数字信号，然后对接收到的信号进行实时处理，一方面显示生物能量波形，一方面存储生物功能信号，另外，它还根据用户的指令对数据进行处理和分析，如平滑、微积分、频谱分析等。
‘捌’ BL-420生物信号记录系统如何获得数据
BL-420生物机能实验系统的基本原理是：首先将原始的生物机能信号，包括生物电信号和通过传感器引入的生物非电信号进行放大（有些生物电信号非常微弱，比如减压神经放电，其信号为微伏级信号，如果不进行信号的前置放大，根本无法观察）、滤波（由于在生物信号中夹杂有众多声、光、电等干扰信号，比如电网的50Hz信号，这些干扰信号的幅度往往比生物电信号本身的强度还要大，如果不将这些干扰信号滤除掉，那么可能会因为过大的干扰信号致使有用的生物机能信号本身无法观察）等处理，然后对处理的信号通过模数转换进行数字化并将数字化后的生物机能信号传输到计算机内部，计算机则通过专用的生物机能实验系统软件接收从生物信号放大、采集卡传入的数字信号，然后对这些收到的信号进行实时处理，一方面进行生物机能波形的显示，一方面进行生物机能信号的存贮，另外，它还要根据使用者的命令对数据进行指定的处理和分析，比如平滑滤波，微积分、频谱分析等。对于存贮在计算机内部的实验数据，生物机能实验系统软件可以随时将其调出进行观察和分析，还可以将重要的实验波形和分析数据进行打印。
‘玖’ 膈神经质只通过上纵隔和中纵隔吗
臂丛
由下位4个颈神经（C5~8)的前支与第1胸神经前支的大部分所组成。偶尔也有第4颈神经和第2胸神经分支参加。臂丛的5个神经根，从椎间孔穿出后，经过由颈椎横突前、后结节形成的沟槽，行经椎动脉后侧及前后横突间肌之间向外侧行，再于前、中斜角肌间的斜角肌间隙穿出。在此第5、6颈神经于中斜角肌侧缘处合成上干；第7颈神经单独成中干；第8颈神经与第1胸神经，于前斜角肌后侧，合成下干。此3干向外下方在锁骨后侧经过，各干又分为前、后两股，3干共分成6股。上干与中干的前股合成1束，叫外侧束，位于腋动脉的外侧。上、中、下3干的后股合成1束，叫后束，此束位于腋动脉的上侧。而下干的前股独自成为1束，叫内侧束，此束先在腋动脉后侧，然后转
到它的内侧。
臂丛自斜角肌间隙穿出时，锁骨下动脉位于丛的前侧；至颈后三角的颈根部，其表面被颈阔肌、锁骨上神经及颈固有筋膜遮盖；此外，还有颈外静脉的下部、锁骨下神经、颈横静脉、肩胛上静脉、肩胛舌骨肌下腹及颈横动脉，均在丛的前面越过。当臂丛经腋窝入口，进入腋窝，在锁骨及锁骨下肌的后侧时，有肩胛上动脉横过丛的前面。入腋窝后，3束包围腋动脉，在胸小肌下缘，3束分为终末支进入上肢。
臂丛在锁骨中点上方较为集中，位置较浅，临床上常在此处进行臂丛阻滞麻醉，穿刺时不应刺到锁骨内侧1/3段上方，以避免胸膜顶损伤引起气胸。
膈神经（C3~5)主要起自第4颈神经，也常接受第3及第5颈神经的小支。其中含有大量运动纤维，有少量感觉纤维；并与交感神经节间有交通支。因此膈神经内亦有无髓的交感性纤维加入。此种无髓纤维可来自同侧的星状神经节及第2胸神经节；在腹部也可能有腹腔神经节的纤维参加。但来
自迷走神经的交通支则极少。第5颈神经的纤维，有时经锁骨下肌神经而来，此神经有时可能下降到胸腔内，才与膈神经连结。
膈神经在颈部不发任何分支。其自前斜角肌上部外缘，沿该肌的前面，于椎前筋膜的深侧，以近似垂直的方向下降。在颈根部被胸锁乳突肌及颈内静脉遮盖，并有肩胛舌骨肌的中间腱、颈横动脉及肩胛上动脉横过其表面。左膈神经的前面，还有胸导管经过。膈神经的前内侧与迷走神经及颈部交感干相邻接。膈神经继续下降，经锁骨下动脉、静脉之间，自胸廓内动脉的外侧，斜至其内侧（可在该动脉的前侧或后侧经过），进入胸腔。在颈部膈神经的主要标志是直接贴在前斜角肌的前表面。
膈神经是混合神经，支配膈肌的运动及纵膈胸膜及膈上、下、中央部的胸膜和腹膜的感觉。由于右膈神经的感觉纤维尚分布到肝和胆囊邻近的腹膜。故胆囊炎或肝部刺激腹膜所产生的冲动，可随右膈神经传入中枢，因与第3~5颈神经皮支分布的右臂部节段一致，故可引起右肩部的牵涉性痛。左膈神经司心包及膈中央部邻近的感觉，故隔中央及心脏有关刺激，可引起左肩部的牵涉性痛。
有时在膈神经的邻近有副膈神经，出现率为22.5%，是膈神经由第4颈神经来的根纤维以外的一些副根，下行一段后，多在锁骨下静脉附近加入膈神经。
膈肌与膈神经的放电
兔膈神经和膈肌的传出放电
一、实验目的
用膈神经与膈肌放电作为观察呼吸运动的指标,加深对节律性呼吸运动的中枢起源和外界环境改变对呼吸运动的反射性调节作用的认识。
二、实验原理
脑干呼吸中枢的节律性冲动发放,通过脊髓的膈神经及肋间神经下行传导到膈肌与肋间肌,从而产生节律性的呼吸运动。因此,引导膈神经传出纤维的放电和膈肌放电,可直接反映脑干呼吸中枢的活动。同时,膈神经与膈肌放电活动的变化也能反映体内外各种刺激对呼吸运动的反射性影响。
膈肌放电→膈肌收缩→引起吸气
膈肌停止放电→膈肌舒张→引起呼气
三、实验对象
家兔
四、实验器材
哺乳动物手术器械,兔解剖台,20%氨基甲酸乙酯,20ml注射器,约1m长内径0.7cm橡皮管一根,CO2气囊,N2气囊,0.9%氯化钠生理盐水,监听器,引
导电极支架,刺激电极及相连的刺激线,BL—410生物机能实验系统。
五、实验步骤
1、称重
2、麻醉耳缘静脉氨基甲酸乙酯5ml/kg
麻醉药:20%
麻醉指征:肌张力下降、角膜反射消失、呼吸平稳、痛觉明显减退或消失
3、仰卧固定
4、气管插管术:颈前正中纵切口倒“T”型切口
5、分离双侧迷走神经并各穿一细线打松结备用
6、暴露膈肌并安置记录电极:在上腹部正中找到剑突所在部位,在剑突下方3-4cm的地方依次剪去皮肤,沿腹白线在剑突下剪2-3cm切口,打开腹腔,用止血钳夹持剑突尖部并向动物头端翻转剑突,在剑突内表面可见贴附的膈肌,将两根刺激电极平行插入膈肌恢复剑突至原位。
7、安放引导电极:将引导电极支架置于适当的位置,用玻璃分针轻轻挑起膈神经放在电极上,稍稍提高电极,使之悬空与周围组织脱离接触,但切不可将神经拉得过紧,防止损伤。接地电极置于皮肤切口,随仪器并联接地。
六、实验观察
1、BL-410操作:打开电脑,进入BL-410生物机能实验系统,1通道选择肌
电,点击开始按钮,正常呼吸时的膈神经放电:观察动物正常呼吸时的胸廓的运动、呼吸运动和膈神经放电曲线的关系,通过监听器监听与吸气运动相一致的膈神经放电声。
2、于一侧气管插管上连接长橡皮管,待放电活动稳定后堵住插管的另一侧开口一分钟,观察解剖无效腔明显增加时,放电的变化。
3、通过气管插管向气管内缓慢注入CO2,观察吸入气中CO2浓度增加时放电
的变化。
4、肺牵张反射:肺扩大和肺萎缩,观察放电变化。
5、先切断一侧迷走神经,再切断另外一侧迷走神经,观察放电变化。重复肺牵张反射的内容,对比其结果有何不同。
七、实验结果
正常呼吸
八、对实验结果进行讨论
1、增大无效腔时,肺泡中未能与血液进行气体交换的气体增多,因此增大无效腔时动物的吸气加深加快。
2、充入CO2时,肺泡气PCO2随之增大,动脉血PCO2也增大,因而呼吸加
深加快。
3、肺扩张或向肺内充气可引起吸气活动的抑制,所以在吸气末再注入空气时吸气短呼气长。
4、肺萎缩或从肺内抽气则可引起吸气活动的加强,所以呼气末再抽气时吸气长呼气短。
5、肺扩张反射的感受器位于气管到细支气管的平滑肌中,是牵张感受器。冲动经迷走神经粗纤维传入延髓。所以切断迷走神经后,吸气延长、加深,呼吸变得深而漫。
九、注意事项
1、暴露膈肌的手术操作中,腹部的切口不要开得太大,以免腹腔脏器从破口处出来,另外,切口向头端延伸过程中注意不要剪破膈肌造成气胸。
2、实验过程中,注意保持神经、肌肉的湿润和保温,气温低的天气应开空调。
3、每次处理前后要有对照,应待动物呼吸平稳后才能开始做下一步实验项目。
膈肌与膈神经的放电
兔膈神经和膈肌的传出放电
一、 实验目的
用膈神经与膈肌放电作为观察呼吸运动的指标，加深对节律性呼吸运动的中
枢起源和外界环境改变对呼吸运动的反射性调节作用的认识。 二、 实验原理
脑干呼吸中枢的节律性冲动发放，通过脊髓的膈神经及肋间神经下行传导到
膈肌与肋间肌，从而产生节律性的呼吸运动。因此，引导膈神经传出纤维的
放电和膈肌放电，可直接反映脑干呼吸中枢的活动。同时，膈神经与膈肌放
电活动的变化也能反映体内外各种刺激对呼吸运动的反射性影响。
膈肌放电?膈肌收缩?引起吸气
膈肌停止放电?膈肌舒张?引起呼气
三、实验对象
家兔
四、实验器材
哺乳动物手术器械，兔解剖台，20%氨基甲酸乙酯，20ml注射器，约1m长内径0.7cm橡皮管一根，CO气囊，N气囊，0.9%氯化钠生理盐水，监听器，引22
导电极支架，刺激电极及相连的刺激线，BL—410生物机能实验系统。 五、实验步骤
1、称重
2、麻醉 耳缘静脉氨基甲酸乙酯5ml/kg
麻醉药:20%
麻醉指征:肌张力下降、角膜反射消失、呼吸平稳、痛觉明显减退或消失
3、仰卧固定
4、气管插管术:颈前正中纵切口倒“T”型切口
5、分离双侧迷走神经并各穿一细线打松结备用
6、暴露膈肌并安置记录电极:在上腹部正中找到剑突所在部位，在剑突下方3-4cm的地方依次剪去皮肤，沿腹白线在剑突下剪2-3cm切口，打开腹腔，用止血钳夹持剑突尖部并向动物头端翻转剑突，在剑突内表面可见贴附的膈肌，将两根刺激电极平行插入膈肌恢复剑突至原位。
7、安放引导电极:将引导电极支架置于适当的位置，用玻璃分针轻轻挑起膈神经放在电极上，稍稍提高电极，使之悬空与周围组织脱离接触，但切不可将神经拉得过紧，防止损伤。接地电极置于皮肤切口，随仪器并联接地。 六、实验观察
1、BL-410操作:打开电脑，进入BL-410生物机能实验系统，1通道选择肌
电，点击开始按钮， 正常呼吸时的膈神经放电:观察动物正常呼吸时的胸
廓的运动、呼吸运动和膈神经放电曲线的关系，通过监听器监听与吸气运动
相一致的膈神经放电声。
2、于一侧气管插管上连接长橡皮管，待放电活动稳定后堵住插管的另一侧开口一分钟，观察解剖无效腔明显增加时，放电的变化。
3、通过气管插管向气管内缓慢注入CO，观察吸入气中CO浓度增加时放电22
的变化。
1
4、肺牵张反射:肺扩大和肺萎缩，观察放电变化。
5、先切断一侧迷走神经，再切断另外一侧迷走神经，观察放电变化。重复肺牵张反射的内容，对比其结果有何不同。
七、实验结果
正常呼吸
注入空气
2
八、对实验结果进行讨论 注入空气
1、增大无效腔时，肺泡中未能与血液进行气体交换的气体增多，因此增大无效腔时动物的吸气加深加快。
2、充入CO时，肺泡气PCO随之增大，动脉血PCO也增大，因而呼吸加222
深加快。
3、肺扩张或向肺内充气可引起吸气活动的抑制，所以在吸气末再注入空气时吸气短呼气长。
4、肺萎缩或从肺内抽气则可引起吸气活动的加强，所以呼气末再抽气时吸气长呼气短。
5、肺扩张反射的感受器位于气管到细支气管的平滑肌中，是牵张感受器。冲动经迷走神经粗纤维传入延髓。所以切断迷走神经后，吸气延长、加深，呼吸变得深而漫。
九、注意事项
1、暴露膈肌的手术操作中，腹部的切口不要开得太大，以免腹腔脏器从破口处出来，另外，切口向头端延伸过程中注意不要剪破膈肌造成气胸。
2、实验过程中，注意保持神经、肌肉的湿润和保温，气温低的天气应开空调。
3、每次处理前后要有对照，应待动物呼吸平稳后才能开始做下一步实验项目。